中文摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-7页 |
符号说明 | 第8-12页 |
第一章 文献综述 | 第12-23页 |
1.1 引言 | 第12-13页 |
1.2 生物磁分离技术 | 第13-17页 |
1.2.1 磁性纳米材料 | 第13-14页 |
1.2.2 Fe_3O_4磁性纳米材料 | 第14-15页 |
1.2.3 纳米磁性复合材料 | 第15-16页 |
1.2.4 Fe_3O_4@Au纳米磁性复合粒子 | 第16-17页 |
1.3 固定化金属螯合亲和层析(IMAC) | 第17-18页 |
1.4 金属螯合亲和磁性纳米粒子(IMAN) | 第18-19页 |
1.4.1 IMAN分离纯化核酸的机理 | 第18-19页 |
1.4.2 影响IMAN分离纯化的因素 | 第19页 |
1.5 质粒DNA分离纯化现状 | 第19-21页 |
1.5.1 传统方法 | 第20页 |
1.5.2 磁性载体法 | 第20-21页 |
1.6 本研究的目的意义及内容 | 第21-23页 |
1.6.1 研究目的意义 | 第21-22页 |
1.6.2 研究内容 | 第22-23页 |
第二章 Fe_3O_4@Au的合成、修饰及表征 | 第23-37页 |
2.1 引言 | 第23-24页 |
2.2 材料与方法 | 第24-28页 |
2.2.1 试验材料及仪器设备 | 第24-25页 |
2.2.2 Fe_3O_4磁性纳米粒子的合成 | 第25页 |
2.2.3 Fe_3O_4磁性纳米粒子的巯基化修饰 | 第25-26页 |
2.2.4 Fe_3O_4@Au纳米磁性复合粒子的合成及纯化 | 第26页 |
2.2.5 Fe_3O_4@Au纳米磁性复合粒子的表面修饰 | 第26-27页 |
2.2.6 磁性纳米粒子的表征 | 第27-28页 |
2.3 结果与讨论 | 第28-36页 |
2.3.1 表观鉴定 | 第28-30页 |
2.3.2 透射电镜分析 | 第30-31页 |
2.3.3 紫外可见吸收光谱分析 | 第31-33页 |
2.3.4 红外光谱分析 | 第33-35页 |
2.3.6 磁性能分析 | 第35-36页 |
2.4 本章小结 | 第36-37页 |
第三章 Fe_3O_4@Au-TA-NTA-Zn~(2+) MNPs在pDNA分离纯化中的应用 | 第37-57页 |
3.1 引言 | 第37页 |
3.2 材料与方法 | 第37-43页 |
3.2.1 试验材料及仪器设备 | 第37-38页 |
3.2.2 重要试剂配制方法 | 第38-39页 |
3.2.3 大肠杆菌培养 | 第39页 |
3.2.4 菌体裂解液制备 | 第39-40页 |
3.2.5 吸附条件的优化 | 第40-42页 |
3.2.5.1 磷酸根浓度的影响 | 第40-41页 |
3.2.5.2 盐离子浓度的影响 | 第41页 |
3.2.5.3 pH的影响 | 第41页 |
3.2.5.4 纳米磁性复合粒子用量的影响 | 第41页 |
3.2.5.5 时间的影响 | 第41-42页 |
3.2.6 洗脱条件的优化 | 第42-43页 |
3.2.6.1 EDTA浓度的影响 | 第42-43页 |
3.2.6.2 盐离子浓度的影响 | 第43页 |
3.2.6.3 时间的影响 | 第43页 |
3.2.7 光密度分析 | 第43页 |
3.2.8 质粒DNA酶切鉴定 | 第43页 |
3.3 结果与讨论 | 第43-55页 |
3.3.1 磷酸根浓度对吸附的影响 | 第43-47页 |
3.3.2 盐离子浓度对吸附的影响 | 第47-48页 |
3.3.3 pH对吸附的影响 | 第48-49页 |
3.3.4 纳米磁性复合粒子用量对吸附的影响 | 第49-50页 |
3.3.5 时间对吸附的影响 | 第50-51页 |
3.3.6 EDTA浓度对洗脱的影响 | 第51-52页 |
3.3.7 盐离子浓度对洗脱的影响 | 第52-54页 |
3.3.8 时间对洗脱的影响 | 第54-55页 |
3.3.9 质粒DNA酶切鉴定 | 第55页 |
3.4 本章小结 | 第55-57页 |
第四章 结论与展望 | 第57-59页 |
4.1 结论 | 第57页 |
4.2 展望 | 第57-59页 |
创新点 | 第59-60页 |
参考文献 | 第60-69页 |
致谢 | 第69-70页 |
攻读硕士学位期间发表的论文 | 第70页 |