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Fe3O4@Au纳米复合材料的合成及对质粒DNA的纯化研究

中文摘要第4-6页
ABSTRACT第6-7页
符号说明第8-12页
第一章 文献综述第12-23页
    1.1 引言第12-13页
    1.2 生物磁分离技术第13-17页
        1.2.1 磁性纳米材料第13-14页
        1.2.2 Fe_3O_4磁性纳米材料第14-15页
        1.2.3 纳米磁性复合材料第15-16页
        1.2.4 Fe_3O_4@Au纳米磁性复合粒子第16-17页
    1.3 固定化金属螯合亲和层析(IMAC)第17-18页
    1.4 金属螯合亲和磁性纳米粒子(IMAN)第18-19页
        1.4.1 IMAN分离纯化核酸的机理第18-19页
        1.4.2 影响IMAN分离纯化的因素第19页
    1.5 质粒DNA分离纯化现状第19-21页
        1.5.1 传统方法第20页
        1.5.2 磁性载体法第20-21页
    1.6 本研究的目的意义及内容第21-23页
        1.6.1 研究目的意义第21-22页
        1.6.2 研究内容第22-23页
第二章 Fe_3O_4@Au的合成、修饰及表征第23-37页
    2.1 引言第23-24页
    2.2 材料与方法第24-28页
        2.2.1 试验材料及仪器设备第24-25页
        2.2.2 Fe_3O_4磁性纳米粒子的合成第25页
        2.2.3 Fe_3O_4磁性纳米粒子的巯基化修饰第25-26页
        2.2.4 Fe_3O_4@Au纳米磁性复合粒子的合成及纯化第26页
        2.2.5 Fe_3O_4@Au纳米磁性复合粒子的表面修饰第26-27页
        2.2.6 磁性纳米粒子的表征第27-28页
    2.3 结果与讨论第28-36页
        2.3.1 表观鉴定第28-30页
        2.3.2 透射电镜分析第30-31页
        2.3.3 紫外可见吸收光谱分析第31-33页
        2.3.4 红外光谱分析第33-35页
        2.3.6 磁性能分析第35-36页
    2.4 本章小结第36-37页
第三章 Fe_3O_4@Au-TA-NTA-Zn~(2+) MNPs在pDNA分离纯化中的应用第37-57页
    3.1 引言第37页
    3.2 材料与方法第37-43页
        3.2.1 试验材料及仪器设备第37-38页
        3.2.2 重要试剂配制方法第38-39页
        3.2.3 大肠杆菌培养第39页
        3.2.4 菌体裂解液制备第39-40页
        3.2.5 吸附条件的优化第40-42页
            3.2.5.1 磷酸根浓度的影响第40-41页
            3.2.5.2 盐离子浓度的影响第41页
            3.2.5.3 pH的影响第41页
            3.2.5.4 纳米磁性复合粒子用量的影响第41页
            3.2.5.5 时间的影响第41-42页
        3.2.6 洗脱条件的优化第42-43页
            3.2.6.1 EDTA浓度的影响第42-43页
            3.2.6.2 盐离子浓度的影响第43页
            3.2.6.3 时间的影响第43页
        3.2.7 光密度分析第43页
        3.2.8 质粒DNA酶切鉴定第43页
    3.3 结果与讨论第43-55页
        3.3.1 磷酸根浓度对吸附的影响第43-47页
        3.3.2 盐离子浓度对吸附的影响第47-48页
        3.3.3 pH对吸附的影响第48-49页
        3.3.4 纳米磁性复合粒子用量对吸附的影响第49-50页
        3.3.5 时间对吸附的影响第50-51页
        3.3.6 EDTA浓度对洗脱的影响第51-52页
        3.3.7 盐离子浓度对洗脱的影响第52-54页
        3.3.8 时间对洗脱的影响第54-55页
        3.3.9 质粒DNA酶切鉴定第55页
    3.4 本章小结第55-57页
第四章 结论与展望第57-59页
    4.1 结论第57页
    4.2 展望第57-59页
创新点第59-60页
参考文献第60-69页
致谢第69-70页
攻读硕士学位期间发表的论文第70页

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