| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 1 前言 | 第9-23页 |
| 1.1 概述 | 第9页 |
| 1.2 聚谷氨酸的简介 | 第9-15页 |
| 1.2.1 聚谷氨酸的结构 | 第9-11页 |
| 1.2.2 聚谷氨酸的理化性质 | 第11页 |
| 1.2.3 聚谷氨酸的用途 | 第11-15页 |
| 1.3 聚谷氨酸的定量检测 | 第15页 |
| 1.4 聚谷氨酸的合成方法 | 第15-16页 |
| 1.4.1 化学合成方法 | 第15-16页 |
| 1.4.2 提取法制备聚谷氨酸 | 第16页 |
| 1.4.3 微生物发酵法 | 第16页 |
| 1.5 微生物发酵生产聚谷氨酸的主要菌种 | 第16-17页 |
| 1.6 γ-PGA的生物合成机理 | 第17-19页 |
| 1.7 聚谷氨酸的分离纯化 | 第19-20页 |
| 1.8 CFD简介 | 第20-21页 |
| 1.8.1 计算流体力学发展概况 | 第20页 |
| 1.8.2 CFD在工程中的作用 | 第20-21页 |
| 1.8.3 FLUENT商业软件简介 | 第21页 |
| 1.9 本论文的研究意义和研究内容 | 第21-23页 |
| 1.9.1 研究意义 | 第21页 |
| 1.9.2 研究内容 | 第21-23页 |
| 2 材料与方法 | 第23-30页 |
| 2.1 材料 | 第23-25页 |
| 2.1.1 菌种 | 第23页 |
| 2.1.2 培养基 | 第23页 |
| 2.1.3 主要药品试剂 | 第23-24页 |
| 2.1.4 主要仪器设备 | 第24-25页 |
| 2.2 方法 | 第25-30页 |
| 2.2.1 培养方法 | 第25页 |
| 2.2.2 分析检测方法 | 第25-26页 |
| 2.2.3 紫外线和He-Ne激光复合诱变复合诱变方法 | 第26-27页 |
| 2.2.4 发酵培养基优化方法 | 第27-28页 |
| 2.2.5 分离提取方法 | 第28-30页 |
| 3 结果与讨论 | 第30-62页 |
| 3.1 发酵液中γ-PGA检测方法的改进 | 第30-34页 |
| 3.1.1 发酵液中不同组分对γ-PGA酸解的影响 | 第30-32页 |
| 3.1.2 γ-PGA酸解条件的优化 | 第32-34页 |
| 3.2 紫外线和He-Ne激光复合诱变的研究 | 第34-40页 |
| 3.2.1 NXTK0001生长曲线确定 | 第34-35页 |
| 3.2.2 诱变程序 | 第35页 |
| 3.2.3 紫外诱变诱变剂量效应及剂量选择 | 第35-36页 |
| 3.2.4 He-Ne激光诱变剂量效应及剂量选择 | 第36-37页 |
| 3.2.5 抗性筛选 | 第37页 |
| 3.2.6 紫外线和He-Ne激光复合诱变 | 第37-38页 |
| 3.2.7 诱变菌株的初筛复筛 | 第38-39页 |
| 3.2.8 遗传稳定性 | 第39页 |
| 3.2.9 结论 | 第39-40页 |
| 3.3 发酵培养基优化 | 第40-49页 |
| 3.3.1 诱变后高产菌A91种子生长曲线 | 第40页 |
| 3.3.2 单因素培养条件优化 | 第40-48页 |
| 3.3.3 正交实验 | 第48-49页 |
| 3.4 基于CFD模拟分析某摇床内部流场 | 第49-57页 |
| 3.4.1 模拟边界条件和假设 | 第50页 |
| 3.4.2 模拟模型和控制方程 | 第50-52页 |
| 3.4.3 CFD模拟结果 | 第52-55页 |
| 3.4.4 摇床发酵培养 | 第55-57页 |
| 3.5 γ-PGA的分离提取 | 第57-62页 |
| 3.5.1 pH和温度对γ-PGA发酵液粘度的影响 | 第57-58页 |
| 3.5.2 乙醇用量对γ-PGA醇析的影响 | 第58页 |
| 3.5.3 不同pH条件对γ-PGA的醇析的影响 | 第58-59页 |
| 3.5.4 干燥方法对醇析样品形成的影响 | 第59-60页 |
| 3.5.5 乙醇醇沉法提取γ-PGA的工艺条件 | 第60-62页 |
| 4 结论 | 第62-63页 |
| 5 展望 | 第63-64页 |
| 6 参考文献 | 第64-70页 |
| 7 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第70-71页 |
| 8 致谢 | 第71页 |
