| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 1 前言 | 第9-20页 |
| 1.1 多不饱和脂肪酸(PUFA)研究背景 | 第9-11页 |
| 1.1.1 多不饱和脂肪酸 | 第9页 |
| 1.1.2 多不饱和脂肪酸的来源 | 第9页 |
| 1.1.3 多不饱和脂肪酸的功能 | 第9-11页 |
| 1.2 高山被孢霉产不饱和脂肪酸 | 第11-13页 |
| 1.2.1 高山被孢霉的安全性 | 第11页 |
| 1.2.2 高山被孢霉产脂研究进展 | 第11-12页 |
| 1.2.3 M.alpine体内脂肪酸代谢途径 | 第12-13页 |
| 1.3 温度对M.ALPINE组分的影响 | 第13页 |
| 1.4 转录组学 | 第13-16页 |
| 1.4.1 转录组学简述 | 第13-14页 |
| 1.4.2 转录组学研究的方法 | 第14-16页 |
| 1.5 代谢组学 | 第16-19页 |
| 1.5.1 代谢组学简介 | 第16页 |
| 1.5.2 代谢组学的研究方法 | 第16-17页 |
| 1.5.3 代谢组学的数据处理 | 第17-18页 |
| 1.5.4 代谢组学的应用 | 第18-19页 |
| 1.6 本论文的研究目的与内容 | 第19-20页 |
| 2 材料与方法 | 第20-26页 |
| 2.1 材料 | 第20-22页 |
| 2.1.1 仪器 | 第20-21页 |
| 2.1.2 试剂 | 第21-22页 |
| 2.1.3 菌株 | 第22页 |
| 2.1.4 培养基 | 第22页 |
| 2.2 培养方法 | 第22页 |
| 2.3 分析方法 | 第22-23页 |
| 2.3.1 生物量的测定 | 第22页 |
| 2.3.2 油脂的提取 | 第22页 |
| 2.3.3 油脂甲酯化方法 | 第22-23页 |
| 2.4 极性脂与中性脂的分离 | 第23页 |
| 2.5 转录组学研究 | 第23-24页 |
| 2.5.1 菌体的制备 | 第23页 |
| 2.5.2 菌体RNA的提取 | 第23-24页 |
| 2.5.3 RNA样品的质量检测 | 第24页 |
| 2.5.4 cDNA第一条链的合成 | 第24页 |
| 2.5.5 转录组测序组装与功能注释 | 第24页 |
| 2.6 代谢组学研究 | 第24-26页 |
| 2.6.1 菌体的制备 | 第24-25页 |
| 2.6.2 代谢物萃取 | 第25页 |
| 2.6.3 代谢物衍生化及检测 | 第25页 |
| 2.6.4 数据处理 | 第25-26页 |
| 3 结果及讨论 | 第26-57页 |
| 3.1 脂肪酸气相色谱检测方法的建立 | 第26-33页 |
| 3.1.1 极性柱Sp-2560对37种脂肪酸甲酯混合标准品的分离效果 | 第26-33页 |
| 3.1.2 弱极性柱Rtx-5对37种脂肪酸甲酯混合标准品的分离效果 | 第33页 |
| 3.2 不同前体物质的添加对高山被孢霉生长及油脂组分的影响 | 第33-38页 |
| 3.2.1 几种植物油的组分分析 | 第33-34页 |
| 3.2.2 吐温的主要成分 | 第34-35页 |
| 3.2.3 添加植物油及吐温对生物量、油脂含量及油脂产量的影响 | 第35-36页 |
| 3.2.4 添加不同植物油及吐温对ARA占油脂的百分含量及产量的影响 | 第36页 |
| 3.2.5 添加不同植物油及吐温对油脂的组分及各组分占油脂的百分含量 | 第36-38页 |
| 3.3 温度对油脂成分的影响 | 第38-40页 |
| 3.4 转录组 | 第40-52页 |
| 3.4.1 转录组的质量检测 | 第40-41页 |
| 3.4.2 转录组测序组装 | 第41-42页 |
| 3.4.3 clean data与unigene比对统计 | 第42-43页 |
| 3.4.4 Unigene功能注释 | 第43-45页 |
| 3.4.5 基因差异表达分析 | 第45-46页 |
| 3.4.6 脂肪合成相关基因 | 第46-52页 |
| 3.5 代谢组 | 第52-57页 |
| 3.5.1 GC-TOFMS检测结果 | 第52-53页 |
| 3.5.2 数据分析 | 第53-57页 |
| 4 结论 | 第57-58页 |
| 5 展望 | 第58-59页 |
| 6 参考文献 | 第59-69页 |
| 7 攻读学位期间发表的论文 | 第69-70页 |
| 8 致谢 | 第70页 |
