| 中文摘要 | 第2-4页 |
| ABSTRACT | 第4-5页 |
| 中文文摘 | 第6-14页 |
| 第1章 绪论 | 第14-28页 |
| 1.1 L-谷氨酰胺的应用 | 第14-16页 |
| 1.1.1 发展新型药物的原料 | 第14页 |
| 1.1.2 临床疾病治疗 | 第14-15页 |
| 1.1.3 运动营养保健 | 第15-16页 |
| 1.1.4 动物饲料 | 第16页 |
| 1.2 L-谷氨酰胺的生物合成途径和L-谷氨酰胺高产菌株生理特性 | 第16-20页 |
| 1.2.1 葡萄糖转化成谷氨酸 | 第17-18页 |
| 1.2.2 谷氨酸转化成L-谷氨酰胺 | 第18-19页 |
| 1.2.3 L-谷氨酰胺高产菌株代谢途径特点 | 第19-20页 |
| 1.3 L-谷氨酰胺高产菌株的选育 | 第20-21页 |
| 1.3.1 L-谷氨酰胺生产菌株 | 第20-21页 |
| 1.3.2 诱变育种概况 | 第21页 |
| 1.4 L-谷氨酰胺发酵控制的主要参数 | 第21-23页 |
| 1.4.1 菌体量 | 第21-22页 |
| 1.4.2 pH | 第22页 |
| 1.4.3 溶氧量 | 第22-23页 |
| 1.4.4 糖耗 | 第23页 |
| 1.5 L-谷氨酰胺的提取精制 | 第23-24页 |
| 1.5.1 L-谷氨酰胺国内外提取精制概况 | 第23页 |
| 1.5.2 L-谷氨酰胺提取精制上的难点 | 第23-24页 |
| 1.5.3 L-谷氨酰胺提取纯化工艺流程 | 第24页 |
| 1.6 论文的立题背景和主要研究内容 | 第24-28页 |
| 1.6.1 立题背景 | 第24-25页 |
| 1.6.2 主要研究内容 | 第25-28页 |
| 第2章 L-谷氨酰胺发酵菌株的选育 | 第28-48页 |
| 2.1 引言 | 第28页 |
| 2.2 材料 | 第28-31页 |
| 2.2.1 实验菌株 | 第28页 |
| 2.2.2 主要试剂和仪器 | 第28-31页 |
| 2.3 实验方法 | 第31-37页 |
| 2.3.1 菌种诱变和筛选方法 | 第31-33页 |
| 2.3.1.1 生长曲线的测定 | 第31页 |
| 2.3.1.2 紫外线诱变 | 第31-32页 |
| 2.3.1.3 甲基磺酸乙酯(EMS)诱变和亚硝基胍(NTG)诱变 | 第32页 |
| 2.3.1.4 磺胺胍抗性突变株的筛选 | 第32-33页 |
| 2.3.1.5 高产菌株的筛选和鉴定 | 第33页 |
| 2.3.2 微生物特性研究方法 | 第33-36页 |
| 2.3.2.1 明胶液化试验 | 第33页 |
| 2.3.2.2 石蕊牛奶试验 | 第33-34页 |
| 2.3.2.3 靛基质试验 | 第34页 |
| 2.3.2.4 V-P实验(Voges-Proskauer test) | 第34-35页 |
| 2.3.2.5 H_2S鉴定试验 | 第35页 |
| 2.3.2.6 甲基红试验 | 第35页 |
| 2.3.2.7 硝酸盐还原试验 | 第35页 |
| 2.3.2.8 淀粉液化试验 | 第35-36页 |
| 2.3.2.9 脲酶活性鉴定试验 | 第36页 |
| 2.3.2.10 过氧化氢酶活性鉴定试验 | 第36页 |
| 2.3.3 营养缺陷型鉴定方法 | 第36-37页 |
| 2.3.3.1 营养缺陷型判断 | 第36-37页 |
| 2.3.3.2 营养缺陷型类别 | 第37页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第37-47页 |
| 2.4.1 菌种诱变和筛选 | 第37-44页 |
| 2.4.1.1 菌体量与光密度之间的关系 | 第37-38页 |
| 2.4.1.2 原菌株的生长曲线 | 第38-39页 |
| 2.4.1.3 致死率曲线 | 第39-41页 |
| 2.4.1.4 菌株SG抗性筛选 | 第41-42页 |
| 2.4.1.5 诱变菌株的耐氨性 | 第42-43页 |
| 2.4.1.6 遗传稳定性测定 | 第43-44页 |
| 2.4.2 L-谷氨酰胺生产菌的微生物特性 | 第44-45页 |
| 2.4.2.1 形态特征 | 第44页 |
| 2.4.2.2 培养特性 | 第44页 |
| 2.4.2.3 生理性质 | 第44-45页 |
| 2.4.3 营养缺陷型鉴定结果 | 第45-47页 |
| 2.4.3.1 营养缺陷型判断 | 第45页 |
| 2.4.3.2 营养缺陷型类型鉴定 | 第45-46页 |
| 2.4.3.3 缺陷型营养鉴定 | 第46-47页 |
| 2.5 本章小结 | 第47-48页 |
| 第3章 L-谷氨酰胺菌种摇瓶发酵 | 第48-64页 |
| 3.1 引言 | 第48页 |
| 3.2 材料和方法 | 第48-51页 |
| 3.2.1 菌种 | 第48页 |
| 3.2.2 主要试剂和仪器 | 第48-50页 |
| 3.2.3 培养方法 | 第50页 |
| 3.2.3.1 斜面培养 | 第50页 |
| 3.2.3.2 种子培养 | 第50页 |
| 3.2.3.3 发酵培养 | 第50页 |
| 3.2.4 分析方法 | 第50-51页 |
| 3.2.4.1 菌体生物量测定 | 第50页 |
| 3.2.4.2 L-谷氨酰胺含量的测定 | 第50-51页 |
| 3.2.4.3 pH测定 | 第51页 |
| 3.2.4.4 发酵液中葡萄糖的测定 | 第51页 |
| 3.2.4.5 发酵液中铵态氮含量的测定 | 第51页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第51-62页 |
| 3.3.1 摇瓶种子培养条件 | 第51-54页 |
| 3.3.1.1 玉米浆用量和摇床转速的关系 | 第51-52页 |
| 3.3.1.2 初始糖最适浓度 | 第52-53页 |
| 3.3.1.3 最适磷酸盐浓度 | 第53-54页 |
| 3.3.2 摇瓶发酵培养基优化 | 第54-59页 |
| 3.3.2.1 最佳碳源 | 第54页 |
| 3.3.2.2 最佳氮源 | 第54-55页 |
| 3.3.2.3 玉米浆最佳浓度 | 第55-56页 |
| 3.3.2.4 磷酸二氢钾的最佳浓度 | 第56页 |
| 3.3.2.5 镁离子的最适浓度 | 第56-57页 |
| 3.3.2.6 微量金属元素最佳浓度 | 第57-58页 |
| 3.3.2.7 最适初始pH | 第58-59页 |
| 3.3.3 摇瓶发酵改进 | 第59-62页 |
| 3.3.3.1 摇瓶发酵主要参数 | 第59-60页 |
| 3.3.3.2 分批补糖和控制pH | 第60-61页 |
| 3.3.3.3 分批补氨 | 第61-62页 |
| 3.4 本章小结 | 第62-64页 |
| 第4章 L-谷氨酰胺罐上发酵工艺优化 | 第64-76页 |
| 4.1 引言 | 第64页 |
| 4.2 材料和方法 | 第64-66页 |
| 4.2.1 主要试剂和仪器 | 第64-66页 |
| 4.2.2 方法 | 第66页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第66-74页 |
| 4.3.1 种子扩大培养 | 第66-69页 |
| 4.3.1.1 葡萄糖最佳浓度 | 第66-67页 |
| 4.3.1.2 维生素H最佳浓度 | 第67-68页 |
| 4.3.1.3 溶氧量 | 第68-69页 |
| 4.3.2 长菌期调控 | 第69-71页 |
| 4.3.2.1 pH | 第69-71页 |
| 4.3.2.2 菌体量 | 第71页 |
| 4.3.3 生产期调控 | 第71-74页 |
| 4.3.3.1 糖耗和补糖 | 第72-73页 |
| 4.3.3.2 pH和补氨 | 第73页 |
| 4.3.3.3 溶氧量 | 第73-74页 |
| 4.4 本章小结 | 第74-76页 |
| 第5章 L-谷氨酰胺发酵液预处理 | 第76-84页 |
| 5.1 引言 | 第76页 |
| 5.2 实验材料及方法 | 第76-78页 |
| 5.2.1 实验材料和仪器 | 第76-77页 |
| 5.2.2 方法 | 第77-78页 |
| 5.3 实验结果与分析 | 第78-83页 |
| 5.3.1 絮凝 | 第78-82页 |
| 5.3.1.1 壳聚糖浓度对絮凝效果的影响 | 第78-79页 |
| 5.3.1.2 壳聚糖和海藻酸钠的比例对絮凝效果的影响 | 第79页 |
| 5.3.1.3 pH值对絮凝效果的影响 | 第79-80页 |
| 5.3.1.4 温度对絮凝效果的影响 | 第80页 |
| 5.3.1.5 搅拌时间对絮凝效果的影响 | 第80-81页 |
| 5.3.1.6 搅拌强度对絮凝效果的影响 | 第81页 |
| 5.3.1.7 絮凝对谷氨酰胺收率的影响以及絮凝的去蛋白效果 | 第81-82页 |
| 5.3.2 脱色 | 第82页 |
| 5.3.3 超滤 | 第82-83页 |
| 5.4 本章小结 | 第83-84页 |
| 第6章 总结与展望 | 第84-86页 |
| 6.1 总结 | 第84-85页 |
| 6.2 展望 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-92页 |
| 攻读学位期间承担的科研任务与主要成果 | 第92-94页 |
| 致谢 | 第94-96页 |
