| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第一章 引言 | 第12-22页 |
| 1.1 鲍鱼 | 第12-13页 |
| 1.1.1 鲍鱼简介 | 第12页 |
| 1.1.2 鲍鱼的发展概况 | 第12页 |
| 1.1.3 鲍鱼的营养价值与开发现状 | 第12-13页 |
| 1.2 活性多肽的研究发展 | 第13-14页 |
| 1.3 生物活性肽的功能性 | 第14-17页 |
| 1.3.1 抗肿瘤作用 | 第14页 |
| 1.3.2 降血压作用 | 第14-15页 |
| 1.3.3 抗菌肽 | 第15-16页 |
| 1.3.4 抗氧化肽 | 第16-17页 |
| 1.4 多肽的研究进展 | 第17-19页 |
| 1.4.1 提取多肽的方法 | 第17-18页 |
| 1.4.2 多肽的分离纯化方法 | 第18-19页 |
| 1.5 蛋白质水解度的测定方法 | 第19-20页 |
| 1.6 抗氧化活性的测定方法 | 第20-21页 |
| 1.7 本项目的研究意义和研究内容和拟解决的关键问题 | 第21-22页 |
| 1.7.1 本论文研究的意义 | 第21页 |
| 1.7.2 本论文的研究内容 | 第21-22页 |
| 第二章 鲍鱼内脏蛋白质酶解工艺的研究 | 第22-34页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-23页 |
| 2.1.1 试验原料 | 第22页 |
| 2.1.2 试剂 | 第22页 |
| 2.1.3 仪器 | 第22-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-25页 |
| 2.2.1 鲍鱼内脏粗蛋白质含量的测定 | 第23页 |
| 2.2.2 水解度的测定 | 第23-24页 |
| 2.2.3 还原力的测定 | 第24-25页 |
| 2.2.4 原料预处理 | 第25页 |
| 2.2.5 酶的选择 | 第25页 |
| 2.2.6 酶活的测定 | 第25页 |
| 2.3 结果与分析 | 第25-32页 |
| 2.3.1 各种酶解物的水解度的结果如下： | 第25-26页 |
| 2.3.2 酶解工艺的优化 | 第26-32页 |
| 2.4 讨论 | 第32-33页 |
| 2.4.1 酶作用的探讨 | 第32-33页 |
| 2.4.2 酶解工艺的探讨 | 第33页 |
| 2.5 小结 | 第33-34页 |
| 第三章 鲍鱼内脏蛋白酶解物的分离纯化 | 第34-41页 |
| 3.1 实验材料 | 第34-35页 |
| 3.1.1 实验原料 | 第34页 |
| 3.1.2 试剂 | 第34页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第34-35页 |
| 3.2 实验方法 | 第35-37页 |
| 3.2.1 鲍鱼内脏蛋白质的酶解液的制备 | 第35页 |
| 3.2.2 鲍鱼内脏抗氧化肽的提取工艺 | 第35-36页 |
| 3.2.3 蛋白质含量的测定 | 第36页 |
| 3.2.4 多肽得率的计算 | 第36-37页 |
| 3.2.5 还原能力的测定 | 第37页 |
| 3.3 结果与分析 | 第37-39页 |
| 3.3.1 超滤条件 | 第37页 |
| 3.3.2 透析去盐 | 第37页 |
| 3.3.3 酪蛋白双缩脲标准曲线 | 第37-38页 |
| 3.3.4 多肽还原性的测定 | 第38-39页 |
| 3.4 讨论 | 第39页 |
| 3.4.1 多肽分离方法的探讨 | 第39页 |
| 3.4.2 脱盐方法的探讨 | 第39页 |
| 3.5 本章小结 | 第39-41页 |
| 第四章 鲍鱼内脏抗氧化肽的体外活性研究 | 第41-48页 |
| 4.1 实验材料 | 第41-42页 |
| 4.1.1 实验原料 | 第41页 |
| 4.1.2 试剂 | 第41页 |
| 4.1.3 仪器 | 第41-42页 |
| 4.2 实验方法 | 第42-43页 |
| 4.2.1 总抗氧化能力(T-AOC)的测定 | 第42页 |
| 4.2.2 羟自由基清除能力测定 | 第42页 |
| 4.2.3 抗超氧阴离子自由基的测定 | 第42-43页 |
| 4.2.4 数据处理 | 第43页 |
| 4.3 结果与分析 | 第43-46页 |
| 4.3.1 多肽总抗氧化活性的测定 | 第43页 |
| 4.3.2 多肽羟自由基清除能力的测定 | 第43-45页 |
| 4.3.3 抗超氧阴离子自由基的测定 | 第45-46页 |
| 4.4 讨论 | 第46-47页 |
| 4.4.1 自由基产生的机制 | 第46页 |
| 4.4.2 抗氧化作用的机制 | 第46-47页 |
| 4.4.3 抗氧化肽分子量大小的探讨 | 第47页 |
| 4.5 结果 | 第47-48页 |
| 第五章 鲍鱼内脏抗氧化肽的体内抗氧化活性研究 | 第48-59页 |
| 5.1 实验材料 | 第48-49页 |
| 5.1.1 实验原料 | 第48页 |
| 5.1.2 试剂 | 第48-49页 |
| 5.1.3 仪器 | 第49页 |
| 5.2 实验方法 | 第49-52页 |
| 5.2.1 小鼠的前处理 | 第49页 |
| 5.2.2 小鼠给药与造模 | 第49页 |
| 5.2.3 样品采集 | 第49-50页 |
| 5.2.4 小鼠肝匀浆液中蛋白质的测定 | 第50页 |
| 5.2.5 小鼠肝匀浆液与血清中谷胱甘肽(GSH)活性的测定 | 第50-51页 |
| 5.2.6 小鼠肝匀浆与血清中丙二醛(MDA)活性的测定 | 第51页 |
| 5.2.7 小鼠肝匀浆和血清中超氧化物岐化酶(SOD)活力的测定 | 第51页 |
| 5.2.8 数据处理 | 第51-52页 |
| 5.3 实验结果 | 第52-57页 |
| 5.3.1 小鼠体重的变化 | 第52-53页 |
| 5.3.2 多肽对小鼠体内谷胱甘肽(GSH)活性的影响 | 第53-54页 |
| 5.3.3 多肽对小鼠体内丙二醛(MDA)活性的影响 | 第54-55页 |
| 5.3.4 多肽对小鼠体内超氧化物岐化酶(SOD)活性的影响 | 第55-57页 |
| 5.4 讨论 | 第57-58页 |
| 5.5 结果 | 第58-59页 |
| 第六章 总结 | 第59-63页 |
| 6.1 结论 | 第59-61页 |
| 6.1.1 酶解工艺的优化 | 第59页 |
| 6.1.2 抗氧化肽的分离纯化 | 第59-60页 |
| 6.1.3 体外抗氧化活性 | 第60页 |
| 6.1.4 体内抗氧化活性 | 第60-61页 |
| 6.1.5 抗氧化作用多肽的探讨 | 第61页 |
| 6.2 特色与创新点 | 第61-62页 |
| 6.3 本实验的缺点以及研究设想 | 第62-63页 |
| 6.3.1 缺点 | 第62页 |
| 6.3.2 今后的研究设想 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-67页 |
| 致谢 | 第67页 |
