| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 1 文献综述 | 第9-16页 |
| 1.1 绿豆概况 | 第9页 |
| 1.2 绿豆生理功能研究进展 | 第9-12页 |
| 1.3 酶分离纯化方法研究进展 | 第12-13页 |
| 1.3.1 根据分子大小不同进行分离纯化 | 第12页 |
| 1.3.2 根据溶解度差异的分离纯化技术 | 第12-13页 |
| 1.4 植物源PAL分离纯化的研究进展 | 第13-14页 |
| 1.5 SOD提取、纯化及L-SOD制备工艺研究进展 | 第14-16页 |
| 1.5.1 植物源SOD提取工艺研究进展 | 第14页 |
| 1.5.2 植物源SOD分离纯化研究进展 | 第14页 |
| 1.5.3 SOD脂质体制备工艺研究进展 | 第14-16页 |
| 2 引言 | 第16-17页 |
| 2.1 立题依据 | 第16页 |
| 2.2 课题主要研究内容 | 第16页 |
| 2.3 课题来源 | 第16-17页 |
| 3 材料与方法 | 第17-26页 |
| 3.1 主要材料、试剂与仪器 | 第17-18页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第17页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第17页 |
| 3.1.3 主要仪器及设备 | 第17-18页 |
| 3.2 实验方法 | 第18-26页 |
| 3.2.1 绿豆基本成分的测定 | 第18页 |
| 3.2.2 明绿豆PAL分离纯化条件的优化 | 第18-20页 |
| 3.2.3 明绿豆PAL的分离纯化 | 第20页 |
| 3.2.4 明绿豆PAL基本性质的研究 | 第20-22页 |
| 3.2.5 明绿豆SOD提取条件的优化 | 第22-23页 |
| 3.2.6 明绿豆SOD的分离纯化 | 第23页 |
| 3.2.7 明绿豆SOD基本性质的研究 | 第23-24页 |
| 3.2.8 明绿豆SOD脂质体制备工艺的优化 | 第24-25页 |
| 3.2.9 包封后L-SOD稳定性研究 | 第25-26页 |
| 4 结果与分析 | 第26-61页 |
| 4.1 绿豆基本成分测定结果 | 第26-30页 |
| 4.2 明绿豆PAL分离纯化条件 | 第30-31页 |
| 4.3 明绿豆PAL的分离纯化 | 第31-32页 |
| 4.4 明绿豆PAL基本性质的研究 | 第32-38页 |
| 4.4.1 最适pH及pH耐受性 | 第32-33页 |
| 4.4.2 最适温度及温度耐受性 | 第33-34页 |
| 4.4.3 底物浓度对明绿豆PAL活力的影响 | 第34页 |
| 4.4.4 动力学曲线 | 第34-35页 |
| 4.4.5 Km值 | 第35页 |
| 4.4.6 抑制剂对明绿豆PAL活力的影响 | 第35-37页 |
| 4.4.7 分子量（SDS-PAGE） | 第37-38页 |
| 4.5 明绿豆SOD提取工艺优化 | 第38-48页 |
| 4.5.1 单因素试验 | 第38-43页 |
| 4.5.2 Plackett-Burman试验设计确定关键影响因素 | 第43-44页 |
| 4.5.3 响应面分析 | 第44-48页 |
| 4.6 SOD的纯化 | 第48-51页 |
| 4.7 明绿豆SOD基本性质的研究 | 第51-54页 |
| 4.7.1 最适pH及pH耐受性 | 第51-52页 |
| 4.7.2 最适温度及温度耐受性 | 第52-53页 |
| 4.7.3 H_2O_2对明绿豆SOD活力的影响 | 第53页 |
| 4.7.4 KCN对明绿豆SOD活力的影响 | 第53-54页 |
| 4.8 明绿豆SOD脂质体制备工艺的优化 | 第54-59页 |
| 4.8.1 单因素试验 | 第54-55页 |
| 4.8.2 响应面分析 | 第55-59页 |
| 4.9 包封后L-SOD稳定性研究 | 第59-61页 |
| 5 讨论 | 第61-62页 |
| 6 结论 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-70页 |
| 致谢 | 第70-71页 |
| 作者简介 | 第71-72页 |
| 攻读硕士期间发表的论文及获奖情况 | 第72页 |