| 第一章 绪论 | 第1-16页 |
| 1．1 CLA的结构特征 | 第8-9页 |
| 1．2 CLA的生理功能 | 第9-10页 |
| 1．2．1 抗癌作用 | 第9页 |
| 1．2．2 抗动脉粥样硬化 | 第9页 |
| 1．2．3 降脂作用 | 第9页 |
| 1．2．4 其他方面的作用 | 第9-10页 |
| 1．3 CLA的天然来源及人工合成 | 第10-12页 |
| 1．3．1 CLA的天然来源 | 第10页 |
| 1．3．2 CLA的化学合成 | 第10-11页 |
| 1．3．3 CLA的生物合成 | 第11-12页 |
| 1．4 CLA的分析检测 | 第12-14页 |
| 1．4．1 紫外检测法 | 第13页 |
| 1．4．2 气相-傅立叶变换红外光谱联用法(GC-FTIR) | 第13页 |
| 1．4．3 气相色谱法(GC) | 第13页 |
| 1．4．4 高效液相色谱法(HPLC) | 第13-14页 |
| 1．4．5 气质联用(GC-MS) | 第14页 |
| 1．5 本研究的目的、内容、意义 | 第14-16页 |
| 1．5．1 研究目的 | 第14页 |
| 1．5．2 研究内容 | 第14页 |
| 1．5．3 研究意义 | 第14-16页 |
| 第二章 乳杆菌洗涤细胞的催化特性及转化生成 CLA的研究 | 第16-29页 |
| 2．1 材料与方法 | 第16-20页 |
| 2．1．1 实验菌种 | 第16页 |
| 2．1．2 主要培养基 | 第16-17页 |
| 2．1．3 主要试剂 | 第17页 |
| 2．1．4 主要实验仪器 | 第17页 |
| 2．1．5 实验方法 | 第17-20页 |
| 2．2 结果与分析 | 第20-28页 |
| 2．2．1 洗涤细胞的催化特性 | 第20-21页 |
| 2．2．2 乳化剂的影响 | 第21-22页 |
| 2．2．3 洗涤细胞反应条件的优化 | 第22-26页 |
| 2．2．4 产物脂肪酸甲酯的红外光谱 | 第26页 |
| 2．2．5 产物脂肪酸甲酯的气相色谱 | 第26-28页 |
| 2．3 本章小节 | 第28-29页 |
| 第三章 植物乳杆菌洗涤细胞转化豆油生成 CLA的研究 | 第29-41页 |
| 3．1 材料与方法 | 第29-32页 |
| 3．1．1 实验菌种 | 第29页 |
| 3．1．2 主要培养基 | 第29页 |
| 3．1．3 主要试剂 | 第29-30页 |
| 3．1．4 主要实验仪器 | 第30页 |
| 3．1．5 实验方法 | 第30-32页 |
| 3．2 结果与分析 | 第32-40页 |
| 3．2．1 菌体培养中亚油酸添加量的影响 | 第32页 |
| 3．2．2 脂酶的作用 | 第32-33页 |
| 3．2．3 乳化剂的影响 | 第33-34页 |
| 3．2．4 氧气的影响 | 第34页 |
| 3．2．5 反应温度的影响 | 第34-35页 |
| 3．2．6 缓冲液系统的影响 | 第35-36页 |
| 3．2．7 正交试验优化细胞浓度、底物浓度和脂酶添加量 | 第36-38页 |
| 3．2．8 豆油制备 CLA的时间曲线 | 第38-39页 |
| 3．2．9 产物中脂肪酸的分析 | 第39-40页 |
| 3．3 本章小节 | 第40-41页 |
| 第四章 固定化细胞转化亚油酸生成c LA的研究 | 第41-55页 |
| 4．1 材料与方法 | 第42-45页 |
| 4．1．1 实验菌种 | 第42页 |
| 4．1．2 主要培养基 | 第42页 |
| 4．1．3 主要试剂 | 第42页 |
| 4．1．4 主要实验仪器 | 第42页 |
| 4．1．5 实验方法 | 第42-45页 |
| 4．2 结果与分析 | 第45-54页 |
| 4．2．1 固定化载体材料的选择 | 第45-46页 |
| 4．2．2 海藻酸钠包埋条件的研究 | 第46-47页 |
| 4．2．3 固定化细胞转化生成 CLA的条件优化 | 第47-49页 |
| 4．2．4 游离洗涤细胞循环使用的研究 | 第49-50页 |
| 4．2．5 固定化细胞循环使用的研究 | 第50-52页 |
| 4．2．6 有机体系中细胞转化反应初探 | 第52-54页 |
| 4．3 本章小节 | 第54-55页 |
| 第五章 结论与建议 | 第55-57页 |
| 5．1 结论 | 第55-56页 |
| 5．2 主要创新点 | 第56页 |
| 5．3 进一步研究的建议 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-61页 |
| 致谢 | 第61-62页 |
| 作者简介 | 第62页 |
