| 摘要 | 第10-13页 |
| 前言 | 第13-25页 |
| 1 欧李的相关研究 | 第13-14页 |
| 1.1 欧李的营养及药用价值 | 第13页 |
| 1.2 欧李的加工利用现状 | 第13-14页 |
| 2 肽营养特性与生物活性的研究 | 第14-17页 |
| 2.1 肽营养特性的研究 | 第14-15页 |
| 2.2 肽生物活性的研究 | 第15-17页 |
| 3 肽的制备、分离纯化、结构分析及构效关系的研究 | 第17-20页 |
| 3.1 肽的制备 | 第17-18页 |
| 3.2 肽的分离纯化 | 第18-19页 |
| 3.3 肽的结构分析方法及构效关系的研究 | 第19-20页 |
| 4 肽抗氧化作用的研究进展 | 第20-22页 |
| 5 肽的免疫调节作用的研究进展 | 第22-23页 |
| 6 本研究的意义 | 第23页 |
| 7 研究内容 | 第23-24页 |
| 8 主要创新点 | 第24-25页 |
| 第一章 欧李仁活性肽的制备 | 第25-52页 |
| 第一节 欧李仁蛋白的提取及含量测定 | 第25-27页 |
| 1 材料 | 第25页 |
| 1.1 试验材料 | 第25页 |
| 1.2 仪器与设备 | 第25页 |
| 2 方法 | 第25-26页 |
| 2.1 欧李仁蛋白的提取 | 第25-26页 |
| 2.2 欧李仁蛋白含量及成分的测定 | 第26页 |
| 3 结果与分析 | 第26页 |
| 3.1 欧李仁粕基本成分分析 | 第26页 |
| 3.2 欧李仁蛋白粉基本成分分析 | 第26页 |
| 4 结论 | 第26-27页 |
| 第二节 欧李仁蛋白水解酶的筛选 | 第27-46页 |
| 1 材料与设备 | 第27页 |
| 1.1 试验材料 | 第27页 |
| 1.2 仪器与设备 | 第27页 |
| 2 方法 | 第27-29页 |
| 2.1 酶解条件的确定 | 第27-28页 |
| 2.2 欧李仁蛋白水解酶的筛选 | 第28页 |
| 2.3 蛋白质水解度的测定 | 第28-29页 |
| 2.3.1 欧李仁蛋白完全水解液的制备 | 第28页 |
| 2.3.2 工作曲线的绘制 | 第28页 |
| 2.3.3 水解液水解度的测定 | 第28-29页 |
| 3 结果与分析 | 第29-45页 |
| 3.1 碱性蛋白酶酶解条件的确定 | 第29-31页 |
| 3.1.1 碱性蛋白酶添加量对水解度的影响 | 第29页 |
| 3.1.2 碱性蛋白酶底物浓度对水解度的影响 | 第29-30页 |
| 3.1.3 碱性性蛋白酶pH对水解度的影响 | 第30页 |
| 3.1.4 碱性蛋白酶反应温度对水解度的影响 | 第30-31页 |
| 3.1.5 碱性蛋白酶水解时间对水解度的影响 | 第31页 |
| 3.2 中性性蛋白酶酶解条件的确定 | 第31-33页 |
| 3.2.1 中性蛋白酶添加量对水解度的影响 | 第31-32页 |
| 3.2.2 中性蛋白酶底物浓度对水解度的影响 | 第32页 |
| 3.2.3 中性蛋白酶pH对水解度的影响 | 第32页 |
| 3.2.4 中性蛋白酶反应温度对水解度的影响 | 第32-33页 |
| 3.2.5 中性蛋白酶水解时间对水解度的影响 | 第33页 |
| 3.3 酸性性蛋白酶酶解条件的确定 | 第33-36页 |
| 3.3.1 酸性蛋白酶添加量对水解度的影响 | 第33-34页 |
| 3.3.2 酸性蛋白酶底物浓度对水解度的影响 | 第34页 |
| 3.3.3 酸性蛋白酶pH对水解度的影响 | 第34-35页 |
| 3.3.4 酸性蛋白酶反应温度对水解度的影响 | 第35页 |
| 3.3.5 酸性蛋白酶水解时间对水解度的影响 | 第35-36页 |
| 3.4 胰蛋白酶酶解条件的确定 | 第36-38页 |
| 3.4.1 胰蛋白酶最适添加量对水解度的影响 | 第36页 |
| 3.4.2 胰蛋白酶最适底物浓度的确定 | 第36页 |
| 3.4.3 胰蛋白酶pH对水解度的影响 | 第36-37页 |
| 3.4.4 胰蛋白酶反应温度对水解度的影响 | 第37页 |
| 3.4.5 胰蛋白酶水解时间对水解度的影响 | 第37-38页 |
| 3.5 风味蛋白酶酶解条件的确定 | 第38-40页 |
| 3.5.1 风味蛋白酶添加量对水解度的影响 | 第38页 |
| 3.5.2 风味蛋白酶最适底物浓度的确定 | 第38-39页 |
| 3.5.3 风味蛋白酶pH对水解度的影响 | 第39页 |
| 3.5.4 风味蛋白酶反应温度对水解度的影响 | 第39页 |
| 3.5.5 风味蛋白酶水解时间对水解度的影响 | 第39-40页 |
| 3.6 木瓜蛋白酶酶解条件的确定 | 第40-42页 |
| 3.6.1 木瓜蛋白酶添加量对水解度的影响 | 第40页 |
| 3.6.2 木瓜蛋白酶底物浓度对水解度的影响 | 第40-41页 |
| 3.6.3 木瓜蛋白酶pH对水解度的影响 | 第41页 |
| 3.6.4 木瓜蛋白酶反应温度对水解度的影响 | 第41页 |
| 3.6.5 木瓜蛋白酶水解时间对水解度的影响 | 第41-42页 |
| 3.7 复合蛋白酶酶解条件的确定 | 第42-44页 |
| 3.7.1 复合蛋白酶添加量对水解度的影响 | 第42页 |
| 3.7.2 复合蛋白酶底物浓度对水解度的影响 | 第42-43页 |
| 3.7.3 复合蛋白酶pH对水解度的影响 | 第43页 |
| 3.7.4 复合蛋白酶反应温度对水解度的影响 | 第43-44页 |
| 3.7.5 复合蛋白酶水解时间对水解度的影响 | 第44页 |
| 3.8 欧李仁蛋白水解酶的筛选 | 第44-45页 |
| 4 讨论 | 第45页 |
| 5 结论 | 第45-46页 |
| 第三节 欧李仁活性肽的制备 | 第46-52页 |
| 1 材料与设备 | 第46页 |
| 1.1 试验材料 | 第46页 |
| 1.2 仪器与设备 | 第46页 |
| 2 方法 | 第46-48页 |
| 2.1 欧李仁蛋白酶解制备活性肽酶解工艺的确定 | 第46-47页 |
| 2.1.1 单酶水解 | 第46-47页 |
| 2.1.2 双酶复合水解 | 第47页 |
| 2.1.3 三酶复合水解 | 第47页 |
| 2.1.4 欧李仁活性肽的制备 | 第47页 |
| 2.2 欧李仁活性肽对DPPH·自由基清除率的测定 | 第47-48页 |
| 3 结果与分析 | 第48-51页 |
| 3.1 碱性蛋白酶、胰蛋白酶和中性蛋白酶不同酶解时间对DPPH·自由基清除率的影响 | 第48-49页 |
| 3.2 双酶分步复合水解对DPPH·自由基清除率的影响 | 第49-50页 |
| 3.3 三酶分步复合水解对DPPH·自由基清除率的影响 | 第50页 |
| 3.4 欧李仁活性肽的制备及其对DPPH·自由基清除率的影响 | 第50-51页 |
| 4 讨论 | 第51页 |
| 5 结论 | 第51-52页 |
| 第二章 欧李仁活性肽抗氧化及免疫调节作用的研究 | 第52-72页 |
| 第一节 欧李仁活性肽抗氧化作用的研究 | 第52-63页 |
| 1 材料与设备 | 第52-53页 |
| 1.1 试验材料 | 第52页 |
| 1.2 仪器与设备 | 第52-53页 |
| 2 方法 | 第53-56页 |
| 2.1 动物试验设计 | 第53页 |
| 2.2 试样采集与制备 | 第53页 |
| 2.3 抗氧化功能指标的测定 | 第53-55页 |
| 2.3.1 组织蛋白质的测定 | 第53页 |
| 2.3.2 超氧化物歧化酶活性的测定 | 第53-54页 |
| 2.3.3 谷胱甘肽过氧化物酶活性的测定 | 第54-55页 |
| 2.3.4 丙二醛浓度的测定 | 第55页 |
| 2.4 数据统计与分析 | 第55-56页 |
| 3 结果与分析 | 第56-60页 |
| 3.1 欧李仁活性肽对正常小鼠体内抗氧化活性的影响 | 第56-58页 |
| 3.1.1 欧李仁活性肽对正常小鼠体重的影响 | 第56页 |
| 3.1.2 欧李仁活性肽对正常小鼠体内SOD活性的影响 | 第56-57页 |
| 3.1.3 欧李仁活性肽对正常小鼠体内GSH-PX活性的影响 | 第57页 |
| 3.1.4 欧李仁活性肽对正常小鼠体内MDA浓度的影响 | 第57-58页 |
| 3.2 欧李仁活性肽对模型鼠体内抗氧化活性的影响 | 第58-60页 |
| 3.2.1 欧李仁活性肽对模型小鼠体重的影响 | 第58页 |
| 3.2.2 欧李仁活性肽对模型鼠体内SOD活性的影响 | 第58-59页 |
| 3.2.3 欧李仁活性肽对模型鼠体内GSH-PX活性的影响 | 第59-60页 |
| 3.2.4 欧李仁活性肽对模型鼠体内MDA浓度的影响 | 第60页 |
| 4 讨论 | 第60-61页 |
| 5 结论 | 第61-63页 |
| 第二节 欧李仁活性肽免疫调节作用的研究 | 第63-72页 |
| 1 材料与设备 | 第63-64页 |
| 1.1 试验材料 | 第63页 |
| 1.2 仪器与设备 | 第63-64页 |
| 2 方法 | 第64-66页 |
| 2.1 动物试验设计 | 第64页 |
| 2.2 试样采集 | 第64页 |
| 2.3 免疫功能指标的测定 | 第64-66页 |
| 2.3.1 小鼠免疫器官指数的测定 | 第64页 |
| 2.3.2 小鼠淋巴细胞转化功能的测定 | 第64-65页 |
| 2.3.3 小鼠迟发型变态反应(DTH)的测定 | 第65页 |
| 2.3.4 小鼠血清溶血素的测定 | 第65页 |
| 2.3.5 小鼠血清溶血空斑形成的测定 | 第65页 |
| 2.3.6 小鼠碳廓清指数的测定 | 第65-66页 |
| 2.4 数据统计与分析 | 第66页 |
| 3 结果与分析 | 第66-70页 |
| 3.1 欧李仁活性肽对正常小鼠免疫功能的影响 | 第66-68页 |
| 3.1.1 欧李仁活性肽对小鼠免疫器官指数的影响 | 第66页 |
| 3.1.2 欧李仁活性肽对小鼠淋巴细胞转化功能及迟发型变态反应(DTH)的影响 | 第66-67页 |
| 3.1.3 欧李仁活性肽对小鼠血清溶血素和溶血空斑生成的影响 | 第67页 |
| 3.1.4 欧李仁活性肽对小鼠碳廓清的影响 | 第67-68页 |
| 3.2 欧李仁活性肽对模型鼠免疫功能的影响 | 第68-70页 |
| 3.2.1 欧李仁活性肽对模型鼠免疫器官指数的影响 | 第68页 |
| 3.2.2 欧李仁活性肽对模型鼠淋巴细胞转化功能及迟发型变态反应(DTH)的影响 | 第68-69页 |
| 3.2.3 欧李仁活性肽对模型鼠血清溶血素和溶血空斑生成的影响 | 第69页 |
| 3.2.4 欧李仁活性肽对模型鼠碳廓清的影响 | 第69-70页 |
| 4 讨论 | 第70页 |
| 5 结论 | 第70-72页 |
| 第三章 欧李仁肽的分离纯化及结构的鉴定 | 第72-81页 |
| 第一节 欧李仁肽的分离纯化 | 第72-77页 |
| 1 材料与设备 | 第72页 |
| 1.1 试验材料 | 第72页 |
| 1.2 仪器与设备 | 第72页 |
| 2 方法 | 第72-73页 |
| 2.1 凝胶分离柱的制备及分离 | 第72-73页 |
| 2.1.1 凝胶的处理 | 第72-73页 |
| 2.1.2 装柱 | 第73页 |
| 2.1.3 上样,洗脱 | 第73页 |
| 2.2 对DPPH·自由基清除率的测定 | 第73页 |
| 3 结果与分析 | 第73-75页 |
| 3.1 标准样品层析结果 | 第73-74页 |
| 3.2 欧李仁活性肽分离效果 | 第74-75页 |
| 3.3 欧李仁活性肽不同组分对DPPH·自由基清除率的比较结果 | 第75页 |
| 4 讨论 | 第75-76页 |
| 5 结论 | 第76-77页 |
| 第二节 欧李仁肽一级结构的测定 | 第77-81页 |
| 1 材料与设备 | 第77页 |
| 1.1 试验材料 | 第77页 |
| 1.2 仪器与设备 | 第77页 |
| 2 方法 | 第77-78页 |
| 2.1 液相条件 | 第77页 |
| 2.2 质谱条件 | 第77-78页 |
| 3 结果与分析 | 第78-80页 |
| 4 结论与讨论 | 第80-81页 |
| 全文结论 | 第81-83页 |
| 参考文献 | 第83-88页 |
| Abstract | 第88-91页 |
| 致谢 | 第92页 |
