摘要 | 第1-8页 |
Abstract | 第8-15页 |
1 绪论 | 第15-26页 |
·引言 | 第15-16页 |
·海藻多糖的研究现状 | 第16-19页 |
·海藻多糖的提取纯化 | 第16-18页 |
·海藻多糖的活性研究 | 第18页 |
·海藻多糖结构分析 | 第18页 |
·海藻多糖分子量的测定方法研究 | 第18-19页 |
·低分子量岩藻聚糖的制备 | 第19-21页 |
·物理降解法 | 第20页 |
·化学降解法 | 第20页 |
·生物降解法 | 第20-21页 |
·海藻岩藻聚糖降解酶的研究现状 | 第21-22页 |
·海藻多糖降解酶的原料来源 | 第21-22页 |
·海藻多糖降解酶的性质 | 第22页 |
·岩藻聚糖的抗肿瘤活性 | 第22-24页 |
·抗肿瘤机制 | 第23-24页 |
·本课题的立题背景和研究意义 | 第24-25页 |
·研究内容及研究目标 | 第25-26页 |
2 沙钻鱼内脏中降解马尾藻岩藻聚糖粗酶的提取研究 | 第26-41页 |
·引言 | 第26页 |
·实验材料 | 第26-27页 |
·主要试剂 | 第26-27页 |
·主要仪器 | 第27页 |
·实验方法 | 第27-30页 |
·蛋白酶活力的测定 | 第27-28页 |
·水溶性蛋白含量的测定 | 第28页 |
·原料的选择 | 第28页 |
·粗酶液的制备 | 第28-29页 |
·硫酸铵分级沉淀 | 第29-30页 |
·SephadexG-100 凝胶柱层析 | 第30页 |
·结果与分析 | 第30-40页 |
·酶活力测定的标准曲线的制备 | 第30-31页 |
·可溶性蛋白质测定标准曲线的制备 | 第31页 |
·原料的确定 | 第31页 |
·粗酶液制备条件的确定 | 第31-35页 |
·降解粗酶盐析条件的确定 | 第35-39页 |
·SephadexG-100 凝胶柱层析分析 | 第39页 |
·讨论 | 第39-40页 |
·本章小结 | 第40-41页 |
3 亨氏马尾藻岩藻聚糖酶降解及分子量的测定 | 第41-64页 |
·引言 | 第41-42页 |
·实验材料 | 第42-43页 |
·主要试剂 | 第42页 |
·主要仪器 | 第42-43页 |
·实验方法 | 第43-47页 |
·琼脂凝胶柱层析分离纯化马尾藻多糖 | 第43页 |
·亨氏马尾藻岩藻聚糖纯度的鉴定 | 第43页 |
·亨氏马尾藻岩藻聚糖降解条件的确定 | 第43-44页 |
·亨氏马尾藻岩藻聚糖理化组分的分析及分子量的测定 | 第44-47页 |
·红外光谱分析 | 第47页 |
·结果与分析 | 第47-63页 |
·琼脂糖凝胶柱层析分离纯化亨氏马尾藻多糖 | 第47-48页 |
·琼脂凝胶柱层析鉴定各多糖组分纯度 | 第48页 |
·亨氏马尾藻岩藻聚糖酶降解条件的研究 | 第48-53页 |
·理化组分的测定结果 | 第53-55页 |
·凝胶过滤法测定各多糖组分及其降解产物的相对分子量分布 | 第55-57页 |
·红外图谱及分析 | 第57-62页 |
·讨论 | 第62-63页 |
·本章小结 | 第63-64页 |
4 亨氏马尾藻岩藻聚糖体外抗肿瘤活性的研究 | 第64-87页 |
·引言 | 第64-65页 |
·实验材料 | 第65-67页 |
·细胞株 | 第65页 |
·药物 | 第65页 |
·主要试剂 | 第65页 |
·主要仪器 | 第65-66页 |
·主要试剂配制 | 第66-67页 |
·实验方法 | 第67-70页 |
·肿瘤细胞的培养 | 第67页 |
·肿瘤细胞的复苏、传代、冻存 | 第67-68页 |
·细胞的计数 | 第68页 |
·亨氏马尾藻岩藻聚糖对三种肿瘤细胞增殖的影响 | 第68-69页 |
·三种肿瘤细胞铺板数量的确定 | 第69-70页 |
·倒置显微镜观察细胞形态 | 第70页 |
·统计与分析方法 | 第70页 |
·结果与分析 | 第70-85页 |
·MTT 比色法测定三种肿瘤细胞铺板数量 | 第70-72页 |
·亨氏马尾藻岩藻聚糖对肿瘤细胞抑制作用的浓度确定 | 第72-73页 |
·贴壁细胞消化过程 | 第73-74页 |
·亨氏马尾藻岩藻聚糖作用于三种肿瘤细胞的形态观察 | 第74-76页 |
·亨氏马尾藻岩藻聚糖对三种肿瘤细胞增殖的影响情况及IC_(50) 值 | 第76-84页 |
·讨论 | 第84-85页 |
·本章小结 | 第85-87页 |
5 总结论和展望 | 第87-89页 |
参考文献 | 第89-96页 |
致谢 | 第96-97页 |
作者简历 | 第97页 |
导师简介 | 第97页 |