摘要 | 第3-4页 |
Abstract | 第4-5页 |
前言 | 第8-13页 |
研究背景 | 第8-12页 |
研究目的和意义 | 第12-13页 |
技术路线 | 第13页 |
第一章 :玉米赤霉烯酮毒素直接竞争 ELISA 方法的建立 | 第13-29页 |
1. 材料与方法 | 第13-16页 |
1.1 主要材料试剂 | 第13-14页 |
1.2 仪器设备 | 第14-15页 |
1.3 主要溶液的配置 | 第15-16页 |
2. 实验方法 | 第16-21页 |
2.1 抗 ZEN 单克隆抗体及抗独特型抗体细胞株的复苏及克隆化 | 第16-18页 |
2.2 抗体的大量制备以及纯化 | 第18页 |
2.3 纯化抗体的鉴定 | 第18-19页 |
2.4 HRP 酶标记 ZEN 单克隆抗体的制备 | 第19页 |
2.5 ZEN 单克隆抗体的特异性检测 | 第19页 |
2.6 一步法无毒 ELISA 建立 | 第19-21页 |
3. 实验结果 | 第21-28页 |
3.1 克隆化后的细胞上清检测 | 第21-22页 |
3.2 腹水型抗体的检测 | 第22页 |
3.3 纯化后抗体的鉴定 | 第22-23页 |
3.4 HRP 与 Mab 偶联质量比的测定 | 第23页 |
3.5 ZEN 单抗与 ZEN 类似物的交叉反应 | 第23-24页 |
3.6 棋盘法确定最佳抗原抗体浓度 | 第24-25页 |
3.7 标准曲线的建立 | 第25-26页 |
3.8 方法的准确度试验 | 第26-27页 |
3.9 加标回收试验结果 | 第27-28页 |
4. 讨论 | 第28-29页 |
第二章 :化学发光酶联免疫检测法的建立 | 第29-38页 |
1. 材料与方法 | 第29-30页 |
1.1 主要材料试剂 | 第29页 |
1.2 仪器设备 | 第29页 |
1.3 主要溶液的配置 | 第29-30页 |
2. 实验方法 | 第30-32页 |
2.1 理化条件的优化 | 第30-31页 |
2.2 直接竞争 CLEIA 方法的建立 | 第31页 |
2.3 方法的准确性实验 | 第31页 |
2.4 加标回收试验 | 第31-32页 |
3. 实验结果 | 第32-37页 |
3.1 理化条件优化结果 | 第32-34页 |
3.2 直接竞争 CLEIA 方法的建立 | 第34-35页 |
3.3 方法的准确性 | 第35-36页 |
3.4 加标试验检测结果 | 第36-37页 |
4. 讨论 | 第37-38页 |
第三章 :玉米赤霉烯酮毒素结合肽的筛选 | 第38-49页 |
1. 仪器设备与材料试剂 | 第38-40页 |
1.1 主要仪器设备 | 第38页 |
1.2 主要材料试剂 | 第38页 |
1.3 试剂配置 | 第38-40页 |
2. 实验方法 | 第40-43页 |
2.0 宿主菌 ER2738 的制备 | 第40页 |
2.1 环七肽库的筛选 | 第40-41页 |
2.2 噬菌体的滴度测定 | 第41页 |
2.3 噬菌体的扩增与纯化 | 第41-42页 |
2.4 阳性克隆的 ELISA 检测 | 第42-43页 |
2.5 噬菌体夹心 ELISA 标准曲线的建立 | 第43页 |
3. 实验结果与分析 | 第43-47页 |
3.1 淘选对噬菌体的富集结果 | 第43-44页 |
3.2 噬菌体单克隆的挑选及初步鉴定 | 第44-46页 |
3.3 噬菌体夹心 ELISA 检测方法的建立 | 第46-47页 |
4. 讨论 | 第47-49页 |
4.1 关于噬菌体随机肽库对模拟肽的淘选 | 第47页 |
4.2 关于噬菌体单克隆淘选与鉴定 | 第47-48页 |
4.3 滴度测定的影响因素 | 第48-49页 |
第四章 :结论与展望 | 第49页 |
参考文献 | 第49-55页 |
在校期间发表论文及专利清单 | 第55-56页 |
致谢 | 第56页 |