| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 引言 | 第12-13页 |
| 1 Z.mobilis乙醇发酵研究进展 | 第13-31页 |
| 1.1 燃料乙醇的开发和利用 | 第13-14页 |
| 1.2 纤维素乙醇混合糖发酵关键技术 | 第14-15页 |
| 1.3 乙醇发酵的EMP和ED代谢途径 | 第15-18页 |
| 1.4 醇发酵工艺 | 第18-20页 |
| 1.4.1 批式发酵 | 第18页 |
| 1.4.2 连续发酵 | 第18-19页 |
| 1.4.3 同步糖化发酵 | 第19-20页 |
| 1.5 Z.mobilis分子生物学研究 | 第20-23页 |
| 1.5.1 分子生物学研究瓶颈 | 第20-21页 |
| 1.5.2 分子生物学研究进展 | 第21-23页 |
| 1.6 细胞自絮凝现象及应用 | 第23-28页 |
| 1.6.1 固定化细胞技术 | 第24-25页 |
| 1.6.2 微生物自絮凝机理 | 第25-27页 |
| 1.6.3 环境胁迫耐受性 | 第27-28页 |
| 1.6.4 细胞絮凝的实际应用 | 第28页 |
| 1.7 比较基因组学研究 | 第28-30页 |
| 1.8 研究工作的目的意义及主要内容 | 第30-31页 |
| 1.8.1 目的及意义 | 第30页 |
| 1.8.2 主要内容 | 第30-31页 |
| 2 Z mobilis发酵特性与酵母的比较 | 第31-48页 |
| 2.1 引言 | 第31页 |
| 2.2 实验材料与仪器 | 第31-33页 |
| 2.2.1 实验菌种 | 第31-32页 |
| 2.2.2 主要试剂和培养基 | 第32页 |
| 2.2.3 主要仪器和设备 | 第32-33页 |
| 2.3 实验方法 | 第33-34页 |
| 2.3.1 ZM4,ZM401和ADY的培养 | 第33页 |
| (1) 斜面培养 | 第33页 |
| (2) 摇瓶培养及发酵 | 第33页 |
| (3) 种子扩大培养及批次发酵 | 第33页 |
| (4) ZM4的分批补料发酵 | 第33页 |
| (5) ZM4和ZM401的玉米秸秆水解液发酵 | 第33页 |
| 2.3.2 发酵各参数分析方法 | 第33-34页 |
| (1) 葡萄糖、乙醇浓度的测定 | 第33-34页 |
| (2) 生物量的测定 | 第34页 |
| (3) 发酵主要副产物的分析方法 | 第34页 |
| 2.4 实验结果与分析 | 第34-46页 |
| 2.4.1 乙醇发酵性能 | 第34-37页 |
| 2.4.2 氧化还原电位 | 第37页 |
| 2.4.3 主要副产物生成 | 第37-40页 |
| 2.4.4 ZM401的乙醇发酵 | 第40-43页 |
| 2.4.5 Z. mobilis对抑制副产物的耐受性 | 第43-46页 |
| 2.5 小结 | 第46-48页 |
| 3 Z.mobilis的絮凝颗粒在线表征及影响因素 | 第48-61页 |
| 3.1 引言 | 第48页 |
| 3.2 实验材料与仪器 | 第48-49页 |
| 3.2.1 实验菌种 | 第48页 |
| 3.2.2 培养基 | 第48页 |
| 3.2.3 主要试剂和仪器 | 第48-49页 |
| 3.3 实验方法 | 第49-50页 |
| 3.3.1 ZM4和ZM401的培养和发酵 | 第49页 |
| 3.3.2 影响ZM401絮凝的因素 | 第49-50页 |
| 3.3.3 ZM401絮凝颗粒的粒径测定 | 第50页 |
| 3.4 实验结果与分析 | 第50-60页 |
| 3.4.1 ZM4与ZM401的发酵颗粒在线表征 | 第50-53页 |
| 3.4.2 影响ZM401絮凝颗粒的因素分析 | 第53-56页 |
| 3.4.3 影响ZM401絮凝形成的因素分析 | 第56-59页 |
| 3.4.4 ZM401的絮凝特征 | 第59-60页 |
| 3.5 小结 | 第60-61页 |
| 4 Z mobilis ZM401絮凝物质及相关基因转录水平比较 | 第61-85页 |
| 4.1 引言 | 第61-62页 |
| 4.2 实验材料与仪器 | 第62-63页 |
| 4.2.1 实验菌种及质粒 | 第62页 |
| 4.2.2 试剂和培养基 | 第62页 |
| 4.2.3 主要仪器和设备 | 第62-63页 |
| 4.3 实验方法 | 第63-70页 |
| 4.3.1 发酵方式 | 第63页 |
| 4.3.2 ZM4和ZM401菌体形态的观察 | 第63-64页 |
| 4.3.3 ZM401菌体的酶法解絮及重絮凝 | 第64页 |
| 4.3.4 ZM4和ZM401絮凝颗粒表征及转录水平检测样品 | 第64页 |
| 4.3.5 ZM4和ZM401纤维素合成酶基因转录水平的检测 | 第64-66页 |
| 4.3.6 运动发酵单胞菌中表达载体的构建 | 第66-70页 |
| 4.4 实验结果与分析 | 第70-83页 |
| 4.4.1 ZM4和ZM401菌体形态对比 | 第70-74页 |
| (1) ZM4和ZM401菌体光镜下形态的比较 | 第70-71页 |
| (2) ZM4和ZM401菌体染色后显微镜下形态的比较 | 第71-72页 |
| (3) ZM4和ZM401菌体电镜下形态的比较 | 第72-74页 |
| 4.4.2 ZM401酶解过程中的观察及形态比较 | 第74-79页 |
| (1) ZM401纤维素酶水解过程中的形态变化 | 第75页 |
| (2) 几种酶水解ZM401絮凝颗粒后的形态 | 第75-76页 |
| (3) ZM401纤维素酶水解后重絮凝的形态 | 第76-77页 |
| (4) ZM401和ZM4胞外絮凝物质的红外光谱图 | 第77-79页 |
| 4.4.3 ZM401纤维素合成酶基因转录水平的分析 | 第79-83页 |
| (1) ZM4和ZM401菌体总RNA | 第79-80页 |
| (2) ZM4和ZM401纤维素合成酶基因转录水平的比较 | 第80-81页 |
| (3) ZM401和ZM4中纤维素合成酶基因的过表达 | 第81-83页 |
| 4.5 小结 | 第83-85页 |
| 5 Z mobilisZM401的全基因组测序及与ZM4的比对分析 | 第85-100页 |
| 5.1 引言 | 第85页 |
| 5.2 实验材料与仪器 | 第85-86页 |
| 5.2.1 实验菌种 | 第85页 |
| 5.2.2 培养基 | 第85页 |
| 5.2.3 主要试剂和仪器 | 第85-86页 |
| 5.3 实验方法 | 第86-92页 |
| 5.3.1 ZM401基因组的提取 | 第86-87页 |
| 5.3.2 ZM401基因组的测序 | 第87页 |
| 5.3.3 ZM401基因组测序信息的分析 | 第87-89页 |
| 5.3.4 ZM401基因组测序结果的拼接 | 第89-90页 |
| 5.3.5 ZM401与ZM4基因组差异比对 | 第90-92页 |
| (1) ZM401基因组SNP的检测 | 第90-91页 |
| (2) ZM401基因组InDel的检测 | 第91-92页 |
| (3) ZM401基因组共线性的分析 | 第92页 |
| 5.4 实验结果与分析 | 第92-99页 |
| 5.4.1 ZM401的基因组数据组装分析 | 第92-93页 |
| 5.4.2 ZM401的基因预测 | 第93页 |
| 5.4.3 ZM401的基因功能注释 | 第93-96页 |
| 5.4.4 ZM401的变异分析 | 第96-99页 |
| 5.5 小结 | 第99-100页 |
| 结论 | 第100页 |
| 后续研究工作展望 | 第100-101页 |
| 创新点摘要 | 第101-102页 |
| 参考文献 | 第102-110页 |
| 附录A 表达载体序列及酶切位点 | 第110-115页 |
| 攻读博士学位期间发表学术论文情况 | 第115-116页 |
| 致谢 | 第116-117页 |
| 作者简介 | 第117-118页 |
