| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 英文縮写索引 | 第8-13页 |
| CONTENTS | 第13-16页 |
| 第一章 绪论 | 第16-26页 |
| ·生物被膜概述 | 第16-19页 |
| ·生物被膜定义及特点 | 第16-17页 |
| ·生物被膜的形成过程 | 第17-18页 |
| ·生物被膜对食品腐败的影响 | 第18页 |
| ·常见控制生物被膜方法 | 第18-19页 |
| ·细菌群体感应 | 第19-22页 |
| ·群体感应的概念 | 第19-20页 |
| ·群体感应系统 | 第20-22页 |
| ·牛奶腐败 | 第22-23页 |
| ·牛奶腐败概述 | 第22页 |
| ·腐败牛奶中的微生物 | 第22-23页 |
| ·国内外研究现状及分析 | 第23-24页 |
| ·生物被膜研究现状 | 第23-24页 |
| ·群体感应与生物被膜形成关系的研究 | 第24页 |
| ·本课题研究的内容及意义 | 第24-26页 |
| 第二章 腐败牛奶中混合菌生物被膜特性研究 | 第26-39页 |
| ·引言 | 第26页 |
| ·实验材料 | 第26-28页 |
| ·实验菌株及来源 | 第26页 |
| ·主要试剂与仪器设备 | 第26-27页 |
| ·培养基及试剂的配制 | 第27-28页 |
| ·实验方法 | 第28-31页 |
| ·四种细菌生物成膜形成能力(B值)测定 | 第28-29页 |
| ·不同培养条件下牛奶中混合菌生物被膜形成测定 | 第29页 |
| ·混合菌生物被膜耐受苯扎溴铵能力 | 第29-30页 |
| ·生物被膜中活菌数检测 | 第30页 |
| ·混合菌AI-2活力 | 第30-31页 |
| ·统计学软件SPSS17.0分析 | 第31页 |
| ·结果与分析 | 第31-37页 |
| ·混合菌与单一菌生物成膜形成能力(B值)测定 | 第31-32页 |
| ·不同腐败条件下牛奶中混合菌生物被膜形成测定 | 第32-34页 |
| ·混合菌生物被膜耐受苯扎溴铵能力 | 第34-35页 |
| ·混合菌生物被膜中活菌数检测 | 第35-36页 |
| ·细菌AI-2活力 | 第36-37页 |
| ·讨论 | 第37-39页 |
| 第三章 菌体无细胞上清液以及三种天然产物对混合菌生物被膜形成的影响 | 第39-49页 |
| ·引言 | 第39-40页 |
| ·实验材料 | 第40-41页 |
| ·实验菌株及来源 | 第40页 |
| ·主要试剂与仪器设备 | 第40-41页 |
| ·培养基及试剂配方 | 第41页 |
| ·实验方法 | 第41-43页 |
| ·菌体上清液影响其他菌体生物被膜形成 | 第41-42页 |
| ·最小抑菌浓度(MIC)测定 | 第42页 |
| ·亚抑菌浓度下生物被膜形成能力的测定 | 第42页 |
| ·细菌AI-2活力测定 | 第42-43页 |
| ·结果与分析 | 第43-48页 |
| ·不同菌体上清液影响其他菌体生物被膜形成能力 | 第43-44页 |
| ·茶多酚、柠檬醛、肉桂醛的最小抑菌浓度 | 第44-45页 |
| ·亚抑菌浓度下三种添加剂对生物膜形成能力的影响 | 第45-47页 |
| ·亚抑菌浓度下三种添加剂对AI-2的影响 | 第47-48页 |
| ·讨论 | 第48-49页 |
| 第四章 呋喃酮以及水果提取物抑制生物被膜研究 | 第49-56页 |
| ·引言 | 第49页 |
| ·实验材料 | 第49-51页 |
| ·实验菌株及来源 | 第49页 |
| ·主要试剂与仪器设备 | 第49-50页 |
| ·培养基及试剂配方 | 第50-51页 |
| ·实验方法 | 第51-52页 |
| ·呋喃酮对混合菌生物被膜形成能力的影响 | 第51页 |
| ·不同水果提取物抑制混合菌生物被膜形成能力 | 第51页 |
| ·不同水果提取物抑制混合菌AI-2活力 | 第51-52页 |
| ·统计学软件SPSS17.0分析 | 第52页 |
| ·结果与分析 | 第52-54页 |
| ·呋喃酮对混合菌生物被膜形成能力的影响 | 第52-53页 |
| ·不同水果提取物抑制混合菌生物被膜形成能力 | 第53-54页 |
| ·不同水果提取物抑制混合菌AI-2活力 | 第54页 |
| ·讨论 | 第54-56页 |
| 结论与展望 | 第56-59页 |
| 参考文献 | 第59-66页 |
| 攻读学位期间发表的论文 | 第66-68页 |
| 致谢 | 第68页 |