摘要 | 第1-4页 |
Abstract | 第4-8页 |
第一章 绪论 | 第8-16页 |
·内切β-1,4-葡聚糖酶简介 | 第8-12页 |
·纤维素酶的酶系组成及协同作用 | 第8页 |
·内切β-1,4-葡聚糖酶的分子结构及分类 | 第8-9页 |
·内切β-1,4-葡聚糖酶的应用 | 第9-10页 |
·内切β-1,4-葡聚糖酶基因的克隆表达研究现状 | 第10-12页 |
·壳寡糖简介 | 第12-14页 |
·壳寡糖的应用 | 第12页 |
·壳寡糖的制备方法 | 第12-13页 |
·壳寡糖的检测方法 | 第13页 |
·纤维素酶制备壳寡糖的研究进展 | 第13-14页 |
·本课题的立题依据及意义 | 第14-15页 |
·本课题的主要研究内容 | 第15-16页 |
第二章 实验材料与方法 | 第16-23页 |
·菌种与质粒 | 第16页 |
·主要试剂 | 第16页 |
·主要仪器 | 第16-17页 |
·培养方法 | 第17-18页 |
·培养基 | 第17页 |
·培养方法 | 第17-18页 |
·分子生物学操作 | 第18-19页 |
·T. fusca 总 DNA 的提取 | 第18页 |
·cel5A 基因的克隆 | 第18-19页 |
·重组表达质粒 pET-24a(+)/pelB-cel5A 的构建 | 第19页 |
·质粒 DNA 的提取 | 第19页 |
·胶回收目的 DNA 片段 | 第19页 |
·分析方法 | 第19-21页 |
·菌体干重的测定 | 第19-20页 |
·蛋白浓度的测定 | 第20页 |
·胞外及周质空间中酶液的获取 | 第20页 |
·质粒稳定性的测定 | 第20页 |
·CMCase 酶活的测定 | 第20页 |
·壳聚糖水解活力的测定 | 第20页 |
·SDS-PAGE 聚丙烯酰胺凝胶电泳分析 | 第20页 |
·壳聚糖水解产物的质谱检测 | 第20-21页 |
·壳聚糖水解产物的高效液相色谱(HPLC-ELSD)检测 | 第21页 |
·重组内切β-1,4-葡聚糖酶 Cel5A 的分离纯化 | 第21页 |
·重组内切β-1,4-葡聚糖酶 Cel5A 的酶学性质 | 第21-22页 |
·最适 pH 及 pH 稳定性 | 第21页 |
·最适温度及热稳定性 | 第21页 |
·金属离子对重组酶酶活力的影响 | 第21-22页 |
·动力学参数的测定 | 第22页 |
·表面活性剂对重组酶酶活的影响 | 第22页 |
·重组内切β-1,4-葡聚糖酶 Cel5A 水解壳聚糖条件的研究 | 第22-23页 |
·底物浓度对水解反应的影响 | 第22页 |
·温度对水解反应的影响 | 第22页 |
·酶用量对水解反应的影响 | 第22页 |
·反应时间对水解反应的影响 | 第22-23页 |
第三章 结果与讨论 | 第23-43页 |
·T. fusca Cel5A 在 E. coli BL21(DE3)中的克隆表达 | 第23-26页 |
·重组表达质粒 pET-24a(+)/pelB-cel5A 的构建 | 第23-24页 |
·重组 Cel5A 在 E. coli BL21(DE3)中的表达 | 第24-26页 |
·重组大肠杆菌产 Cel5A 的发酵条件优化 | 第26-33页 |
·种龄的确定 | 第26页 |
·碳源及其浓度对重组菌产酶的影响 | 第26-28页 |
·氮源及其浓度对重组菌产酶的影响 | 第28-29页 |
·磷酸盐浓度对重组菌产酶的影响 | 第29页 |
·金属离子及其浓度对重组菌产酶的影响 | 第29-30页 |
·正交试验 | 第30-31页 |
·重组大肠杆菌产 Cel5A 的 3 L 发酵罐小试 | 第31-33页 |
·重组 Cel5A 的分离纯化及酶学性质研究 | 第33-38页 |
·重组 Cel5A 的分离纯化 | 第33-34页 |
·重组 Cel5A 的酶学性质研究 | 第34-38页 |
·重组 Cel5A 水解壳聚糖条件的研究 | 第38-43页 |
·重组 Cel5A 水解壳聚糖能力分析 | 第38-39页 |
·底物浓度的影响 | 第39-40页 |
·温度的影响 | 第40页 |
·酶用量的影响 | 第40-41页 |
·水解时间的影响 | 第41-43页 |
第四章 结论与展望 | 第43-44页 |
·主要结论 | 第43页 |
·展望 | 第43-44页 |
致谢 | 第44-46页 |
参考文献 | 第46-51页 |
附录:作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第51页 |