| 摘要 | 第6-9页 |
| abstract | 第9-12页 |
| 第一章 绪论 | 第17-31页 |
| 1.1 问题的提出 | 第17页 |
| 1.2 玉米生物活性肽的制备及其研究现状 | 第17-19页 |
| 1.2.1 传统酶解制备玉米生物活性肽 | 第17-18页 |
| 1.2.2 超声辅助制备玉米生物活性肽 | 第18-19页 |
| 1.3 玉米生物活性肽的活性评价方法 | 第19-21页 |
| 1.3.1 单纯利用化学、细胞评价多肽的功能活性 | 第19-20页 |
| 1.3.2 模拟胃肠道消化吸收结合体外化学、细胞法评价多肽功能活性 | 第20-21页 |
| 1.4 玉米生物活性肽的活性研究进展 | 第21-23页 |
| 1.4.1 玉米多肽抗氧化、ACE抑制活性的研究 | 第21-22页 |
| 1.4.2 玉米多肽的抗炎活性研究 | 第22-23页 |
| 1.5 本课题的立项背景和意义 | 第23-24页 |
| 1.6 主要研究内容 | 第24-25页 |
| 参考文献 | 第25-31页 |
| 第二章 玉米抗氧化活性肽的超声波辅助制备研究及其理化性质和抗氧化活性的研究 | 第31-47页 |
| 2.1 前言 | 第31-32页 |
| 2.2 试验材料和仪器设备 | 第32页 |
| 2.2.1 试验材料及试剂 | 第32页 |
| 2.2.2 仪器设备 | 第32页 |
| 2.3 实验方法 | 第32-35页 |
| 2.3.1 玉米蛋白提取 | 第32页 |
| 2.3.2 玉米蛋白超声处理 | 第32-33页 |
| 2.3.3 酶解玉米蛋白制备玉米抗氧化肽 | 第33页 |
| 2.3.4 水解度测定 | 第33页 |
| 2.3.5 蛋白转化率测定 | 第33页 |
| 2.3.6 分子量分布测定 | 第33-34页 |
| 2.3.7 氨基酸组成测定 | 第34页 |
| 2.3.8 抗氧化活性测定 | 第34-35页 |
| 2.3.9 数据分析 | 第35页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第35-44页 |
| 2.4.1 超声预处理玉米蛋白正交实验分析 | 第35-39页 |
| 2.4.2 超声预处理玉米蛋白对其酶解产物分子量分布的影响 | 第39-40页 |
| 2.4.3 超声预处理玉米蛋白对其酶解产物氨基酸组成的影响 | 第40-41页 |
| 2.4.4 超声预处理玉米蛋白对其酶解产物抗氧化活性的影响 | 第41-44页 |
| 2.4.5 本章小结 | 第44页 |
| 参考文献 | 第44-47页 |
| 第三章 玉米抗氧化肽体外模拟胃肠道消化稳定性研究 | 第47-63页 |
| 3.1 前言 | 第47-48页 |
| 3.2 试验材料和仪器设备 | 第48页 |
| 3.2.1 试验材料及试剂 | 第48页 |
| 3.2.2 主要仪器 | 第48页 |
| 3.3 实验方法 | 第48-50页 |
| 3.3.1 制备玉米抗氧化肽 | 第48页 |
| 3.3.2 模拟胃肠道消化 | 第48-49页 |
| 3.3.3 氨基酸组成测定 | 第49页 |
| 3.3.4 水解度和多肽含量测定 | 第49页 |
| 3.3.5 抗氧化活性测定 | 第49页 |
| 3.3.6 高抗氧化活性肽分离纯化 | 第49页 |
| 3.3.7 高抗氧化活性肽的结构鉴定及其多肽的合成 | 第49-50页 |
| 3.3.8 数据分析 | 第50页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第50-60页 |
| 3.4.1 模拟胃肠道消化对玉米抗氧化肽水解度和多肽含量的影响 | 第50-51页 |
| 3.4.2 模拟胃肠道消化对玉米抗氧化肽抗氧化活性的影响 | 第51-52页 |
| 3.4.3 模拟胃肠道消化对玉米抗氧化肽氨基酸组成的影响 | 第52-54页 |
| 3.4.4 玉米高活性抗氧化肽的分离纯化 | 第54-56页 |
| 3.4.5 玉米高抗氧化肽的结构鉴定 | 第56-60页 |
| 3.4.6 本章小结 | 第60页 |
| 参考文献 | 第60-63页 |
| 第四章 玉米抗氧化肽对结肠炎的抗炎活性研究 | 第63-81页 |
| 4.1 前言 | 第63-64页 |
| 4.2 试验材料和仪器设备 | 第64页 |
| 4.2.1 试验材料及试剂 | 第64页 |
| 4.2.2 主要仪器 | 第64页 |
| 4.3 实验方法 | 第64-66页 |
| 4.3.1 玉米抗氧化肽以及其消化肽的制备 | 第64页 |
| 4.3.2 Caco-2细胞的培养 | 第64-65页 |
| 4.3.3 Caco-2细胞毒性实验 | 第65页 |
| 4.3.4 Caco-2细胞抗炎实验 | 第65页 |
| 4.3.5 动物实验 | 第65-66页 |
| 4.3.6 结肠炎症症状评估 | 第66页 |
| 4.3.7 MPO、TNF-α以及IL-6浓度的检测 | 第66页 |
| 4.3.8 组织切片染色 | 第66页 |
| 4.3.9 统计分析 | 第66页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第66-76页 |
| 4.4.1 玉米抗氧化肽消化产物的对TNF-α致Caco-2细胞炎症的抗炎活性 | 第66-70页 |
| 4.4.2 玉米抗氧化肽对结肠炎小鼠的临床症状的影响 | 第70-72页 |
| 4.4.3 玉米抗氧化肽对结肠炎小鼠结肠MPO、TNF-α以及IL-6影响. | 第72-74页 |
| 4.4.4 玉米抗氧化肽对结肠炎小鼠结肠组织的形态学影响 | 第74-76页 |
| 4.5 结论 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-81页 |
| 第五章 玉米血管内皮细胞抗炎多肽的制备及其抗炎活性研究 | 第81-100页 |
| 5.1 前言 | 第81-82页 |
| 5.2 试验材料和仪器设备 | 第82-83页 |
| 5.2.1 试验试剂及抗体 | 第82页 |
| 5.2.2 细胞系及来源 | 第82页 |
| 5.2.3 主要仪器 | 第82-83页 |
| 5.3 实验方法 | 第83-85页 |
| 5.3.1 玉米醇溶蛋白酶解 | 第83页 |
| 5.3.2 水解度和多肽得率测定 | 第83页 |
| 5.3.3 模拟胃肠道消化 | 第83页 |
| 5.3.4 细胞培养 | 第83页 |
| 5.3.5 Caco-2细胞转运实验 | 第83-84页 |
| 5.3.6 UPLC分析 | 第84页 |
| 5.3.7 EA.hy926细胞炎症实验 | 第84-85页 |
| 5.3.8 抗炎多肽的结构鉴定及其多肽合成 | 第85页 |
| 5.3.9 统计分析 | 第85页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第85-95页 |
| 5.4.1 玉米醇溶蛋白水解产物的抗炎活性 | 第85-87页 |
| 5.4.2 玉米醇溶蛋白水解产物的模拟胃肠道消化及其产物的抗炎活性 | 第87-88页 |
| 5.4.3 嗜热蛋白酶酶解物消化产物的小肠内皮Caco-2单层细胞转运 | 第88-90页 |
| 5.4.4 Caco-2单层细胞转运肽的抗炎活性 | 第90-91页 |
| 5.4.5 模拟胃肠道消化和Caco-2单层细胞吸收后多肽的结构鉴定及合成 | 第91-94页 |
| 5.4.6 本章小结 | 第94-95页 |
| 参考文献 | 第95-100页 |
| 第六章 玉米血管内皮细胞炎症抗炎肽的NF-κB信号通路研究 | 第100-116页 |
| 6.1 前言 | 第100-101页 |
| 6.2 试验材料和仪器设备 | 第101页 |
| 6.2.1 试验试剂及抗体 | 第101页 |
| 6.2.2 细胞系及来源 | 第101页 |
| 6.2.3 主要仪器 | 第101页 |
| 6.3 实验方法 | 第101-103页 |
| 6.3.1 细胞培养 | 第101-102页 |
| 6.3.2 单核细胞粘附实验 | 第102页 |
| 6.3.3 EA.hy926细胞氧自由基检测 | 第102页 |
| 6.3.4 NF-κB信号通路相关因子的检测 | 第102-103页 |
| 6.3.5 统计分析 | 第103页 |
| 6.4 结果与讨论 | 第103-113页 |
| 6.4.1 玉米多肽对TNF-α诱导EA.hy926的ICAM-1和VCAM-1表达的影响 | 第103-104页 |
| 6.4.2 玉米多肽对TNF-α诱导EA.hy926产生活性氧自由基的影响 | 第104-106页 |
| 6.4.3 玉米多肽对TNF-α诱导EA.hy926的单核细胞粘附性的影响 | 第106-108页 |
| 6.4.4 玉米多肽对TNF-α诱导EA.hy926TNFR1和TNFR2表达影响.. | 第108-110页 |
| 6.4.5 玉米多肽对TNF-α诱导EA.hy926的IκBα和IκBβ表达的影响 | 第110-111页 |
| 6.4.6 玉米多肽对TNF-α诱导EA.hy926的p65磷酸化的影响 | 第111-112页 |
| 6.4.7 本章小结 | 第112-113页 |
| 参考文献 | 第113-116页 |
| 第七章 结论与展望 | 第116-120页 |
| 7.1 主要结论 | 第116-117页 |
| 7.2 创新点 | 第117-118页 |
| 7.3 展望 | 第118-120页 |
| 致谢 | 第120-122页 |
| 攻读博士期间科研成果 | 第122页 |
