| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 英文缩写说明 | 第9-10页 |
| 第一章 绪论 | 第10-19页 |
| 1.1 桃仁研究概况 | 第10页 |
| 1.1.1 桃仁概述 | 第10页 |
| 1.1.2 桃仁研究现状 | 第10页 |
| 1.2 生物活性肽的研究 | 第10-14页 |
| 1.2.1 生物活性肽概述 | 第10-11页 |
| 1.2.2 多肽的制备 | 第11-12页 |
| 1.2.3 多肽的分离纯化 | 第12-13页 |
| 1.2.4 多肽的功能活性 | 第13-14页 |
| 1.3 天然活性成分的抗氧化性 | 第14-17页 |
| 1.3.1 自由基与氧化应激 | 第14-15页 |
| 1.3.2 抗氧化防御机制 | 第15页 |
| 1.3.3 抗氧化性能评价方法 | 第15-17页 |
| 1.4 立题依据及研究内容 | 第17-19页 |
| 1.4.1 立题依据 | 第17页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第17-19页 |
| 第二章 桃仁蛋白的提取工艺 | 第19-28页 |
| 2.1 实验材料、试剂及仪器 | 第19-20页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第19页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第19页 |
| 2.1.3 实验仪器 | 第19-20页 |
| 2.2 桃仁成分分析 | 第20-21页 |
| 2.2.1 水分含量 | 第20页 |
| 2.2.2 脂肪含量 | 第20页 |
| 2.2.3 灰分含量 | 第20页 |
| 2.2.4 多糖含量 | 第20-21页 |
| 2.2.5 蛋白质含量 | 第21页 |
| 2.2.6 氨基酸分析 | 第21页 |
| 2.3 桃仁蛋白的提取 | 第21-23页 |
| 2.3.1 桃仁的预处理 | 第21页 |
| 2.3.2 桃仁蛋白等电点的确定 | 第21页 |
| 2.3.3 工艺流程 | 第21页 |
| 2.3.4 桃仁蛋白的提取率 | 第21-22页 |
| 2.3.5 桃仁蛋白提取条件的单因素实验 | 第22页 |
| 2.3.6 桃仁蛋白提取条件的正交试验 | 第22-23页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第23-27页 |
| 2.4.1 桃仁成分分析结果 | 第23-24页 |
| 2.4.2 桃仁蛋白等电点的确定 | 第24-25页 |
| 2.4.3 桃仁蛋白提取条件的单因素实验结果 | 第25-26页 |
| 2.4.4 桃仁蛋白提取条件的正交试验结果 | 第26-27页 |
| 2.5 本章小结 | 第27-28页 |
| 第三章 桃仁抗氧化肽的制备工艺 | 第28-38页 |
| 3.1 实验材料、试剂及仪器 | 第28-29页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第28页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第28页 |
| 3.1.3 实验仪器 | 第28-29页 |
| 3.2 桃仁蛋白成分分析 | 第29页 |
| 3.2.1 桃仁蛋白基本成分分析 | 第29页 |
| 3.2.2 桃仁蛋白氨基酸分析 | 第29页 |
| 3.3 桃仁抗氧化肽的制备 | 第29-31页 |
| 3.3.1 工艺流程 | 第29页 |
| 3.3.2 水解度的测定 | 第29页 |
| 3.3.3 DPPH自由基(DPPH·)清除率的测定 | 第29-30页 |
| 3.3.4 蛋白酶的选择 | 第30页 |
| 3.3.5 酶解的单因素实验 | 第30-31页 |
| 3.3.6 酶解的响应面优化 | 第31页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第31-37页 |
| 3.4.1 桃仁蛋白成分分析结果 | 第31-32页 |
| 3.4.2 蛋白酶的选择 | 第32-33页 |
| 3.4.3 酶解的单因素实验结果 | 第33-35页 |
| 3.4.4 酶解的响应面优化结果 | 第35-37页 |
| 3.5 本章小结 | 第37-38页 |
| 第四章 桃仁多肽的分离纯化及结构鉴定 | 第38-54页 |
| 4.1 实验材料、试剂及仪器 | 第38-39页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第38页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第38页 |
| 4.1.3 实验仪器 | 第38-39页 |
| 4.2 PSAP成分分析 | 第39-40页 |
| 4.2.1 PSAP基本成分分析 | 第39页 |
| 4.2.2 多肽含量的测定 | 第39页 |
| 4.2.3 桃仁蛋白氨基酸分析 | 第39-40页 |
| 4.3 多肽分子量分布的测定 | 第40页 |
| 4.4 体外抗氧化性能测定 | 第40-41页 |
| 4.4.1 DPPH·清除率的测定 | 第40页 |
| 4.4.2 羟基自由基(·OH)清除率的测定 | 第40页 |
| 4.4.3 超氧阴离子自由基(O_2~-·)清除率的测定 | 第40-41页 |
| 4.4.4 还原力的测定 | 第41页 |
| 4.5 桃仁抗氧化肽的分离纯化及结构鉴定 | 第41-44页 |
| 4.5.1 PSAP的超滤分离 | 第41页 |
| 4.5.2 PSAP-3的葡聚糖凝胶柱层析分离 | 第41-42页 |
| 4.5.3 PSAP-3-a的反相高效液相色谱(RP-HPLC)分离 | 第42-43页 |
| 4.5.4 PSAP-3-a-i的结构鉴定 | 第43-44页 |
| 4.6 结果与讨论 | 第44-53页 |
| 4.6.1 PSAP成分分析结果 | 第44页 |
| 4.6.2 PSAP分子量分布的测定 | 第44-45页 |
| 4.6.3 PSAP的超滤分离 | 第45-49页 |
| 4.6.4 PSAP-3的葡聚糖凝胶柱层析分离 | 第49-50页 |
| 4.6.5 PSAP-3-a的RP-HPLC分离 | 第50-51页 |
| 4.6.6 PSAP-3-a-i的MALDI-TOF-MS分析 | 第51-53页 |
| 4.7 本章小结 | 第53-54页 |
| 第五章 桃仁抗氧化肽的细胞内抗氧化作用 | 第54-65页 |
| 5.1 实验材料、试剂及仪器 | 第54-55页 |
| 5.1.1 实验材料 | 第54页 |
| 5.1.2 实验试剂 | 第54页 |
| 5.1.3 实验仪器与设备 | 第54-55页 |
| 5.2 HSF细胞的培养 | 第55页 |
| 5.3 细胞毒性实验 | 第55页 |
| 5.4 细胞内抗氧化能力的测定 | 第55-57页 |
| 5.4.1 PSAP及PSAP-3对H2O2氧化损伤细胞的保护作用 | 第55-56页 |
| 5.4.2 PSAP-3的细胞内抗氧化能力(CAA)实验 | 第56页 |
| 5.4.3 PSAP-3对细胞内SOD、CAT和GSH含量的影响 | 第56-57页 |
| 5.5 结果与讨论 | 第57-63页 |
| 5.5.1 细胞毒性实验结果 | 第57页 |
| 5.5.2 H2O2诱导HSF细胞氧化损伤模型的建立 | 第57-58页 |
| 5.5.3 PSAP及PSAP-3对氧化损伤HSF细胞的保护作用 | 第58页 |
| 5.5.4 细胞形态学观察 | 第58-59页 |
| 5.5.5 PSAP-3的CAA实验结果 | 第59-61页 |
| 5.5.6 PSAP-3对HSF细胞内SOD、CAT和GSH含量的影响 | 第61-63页 |
| 5.6 本章小结 | 第63-65页 |
| 第六章 结论与展望 | 第65-67页 |
| 6.1 全文总结 | 第65-66页 |
| 6.2 展望 | 第66-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-75页 |
| 附录一 ：PSAP-3-a-i中各组分肽的质谱图 | 第75-78页 |
| 附录二 ：作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第78页 |
