| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第12-27页 |
| 1.1 珊瑚菌概况 | 第12-14页 |
| 1.1.1 食用菌概况 | 第12-13页 |
| 1.1.2 珊瑚菌生物学特性 | 第13页 |
| 1.1.3 珊瑚菌研究进展 | 第13-14页 |
| 1.2 食用菌多糖提取分离纯化及结构鉴定研究概况 | 第14-20页 |
| 1.2.1 食用菌多糖提取 | 第14-16页 |
| 1.2.2 食用菌多糖的分离纯化 | 第16-18页 |
| 1.2.3 食用菌多糖纯度鉴定 | 第18页 |
| 1.2.4 食用菌多糖的结构鉴定 | 第18-20页 |
| 1.3 食用菌多糖生物活性的研究 | 第20-25页 |
| 1.3.1 食用菌多糖结构对其生物活性的影响 | 第20-21页 |
| 1.3.2 食用菌多糖生物活性研究进展 | 第21-25页 |
| 1.4 课题研究意义及研究内容 | 第25-27页 |
| 1.4.1 珊瑚菌多糖的研究意义 | 第25-26页 |
| 1.4.2 珊瑚菌多糖的研究内容 | 第26-27页 |
| 第二章 珊瑚菌多糖的提取工艺 | 第27-35页 |
| 2.1 前言 | 第27页 |
| 2.2 实验材料及设备 | 第27页 |
| 2.2.1 实验材料与试剂 | 第27页 |
| 2.2.2 实验仪器与设备 | 第27页 |
| 2.3 实验方法 | 第27-29页 |
| 2.3.1 热水浸提珊瑚菌多糖的工艺探索 | 第27-28页 |
| 2.3.2 珊瑚菌多糖含量的测定 | 第28-29页 |
| 2.4 实验结果与讨论 | 第29-34页 |
| 2.4.1 葡萄糖标准曲线的绘制 | 第29-30页 |
| 2.4.2 单因素实验结果及分析 | 第30-32页 |
| 2.4.3 正交优化珊瑚菌多糖的提取工艺 | 第32-34页 |
| 2.5 本章小结 | 第34-35页 |
| 第三章 珊瑚菌多糖的分离纯化及理化性质研究 | 第35-49页 |
| 3.1 前言 | 第35页 |
| 3.2 实验材料与设备 | 第35-37页 |
| 3.2.1 实验材料与试剂 | 第35-36页 |
| 3.2.2 主要仪器与设备 | 第36-37页 |
| 3.3 实验方法 | 第37-41页 |
| 3.3.1 珊瑚菌粗多糖的制备 | 第37-39页 |
| 3.3.2 珊瑚菌粗多糖的DEAE-52柱层析分离纯化 | 第39页 |
| 3.3.3 珊瑚菌多糖分子量测定及纯度鉴定 | 第39-40页 |
| 3.3.4 珊瑚菌多糖理化性质研究 | 第40-41页 |
| 3.4 实验结果与讨论 | 第41-47页 |
| 3.4.1 珊瑚菌多糖的离子交换柱层析 | 第41-42页 |
| 3.4.2 珊瑚菌多糖分子量测定及纯度判断 | 第42-45页 |
| 3.4.3 珊瑚菌子实体多糖理化性质研究 | 第45-47页 |
| 3.5 本章小结 | 第47-49页 |
| 第四章 RBP-Ⅰ及RBP-Ⅲ结构分析 | 第49-62页 |
| 4.1 前言 | 第49页 |
| 4.2 实验试剂与设备 | 第49-50页 |
| 4.2.1 实验材料与试剂 | 第49-50页 |
| 4.2.2 实验仪器与设备 | 第50页 |
| 4.3 实验方法 | 第50-52页 |
| 4.3.1 珊瑚菌多糖RBP-Ⅰ及RBP-Ⅲ的单糖组成 | 第50-51页 |
| 4.3.2 珊瑚菌多糖RBP-Ⅰ及RBP-Ⅲ红外光谱扫描 | 第51页 |
| 4.3.3 珊瑚菌多糖RBP-Ⅰ及RBP-Ⅲ的高碘酸氧化 | 第51页 |
| 4.3.4 珊瑚菌多糖RBP-Ⅰ及RBP-Ⅲ的Smith降解 | 第51页 |
| 4.3.5 珊瑚菌多糖RBP-Ⅰ及RBP-Ⅲ的核磁共振 | 第51-52页 |
| 4.4 实验结果与讨论 | 第52-60页 |
| 4.4.1 RBP-Ⅰ及RBP-Ⅲ的单糖组成 | 第52-53页 |
| 4.4.2 RBP-Ⅰ及RBP-Ⅲ的红外光谱分析 | 第53-55页 |
| 4.4.3 RBP-Ⅰ及RBP-Ⅲ的高碘酸氧化及Smith降解 | 第55-58页 |
| 4.4.4 RBP-Ⅰ及RBP-Ⅲ的核磁共振 | 第58-60页 |
| 4.5 本章小结 | 第60-62页 |
| 第五章 珊瑚菌多糖的生物活性研究 | 第62-83页 |
| 5.1 前言 | 第62页 |
| 5.2 实验材料与设备 | 第62-64页 |
| 5.2.1 实验材料与试剂 | 第62-63页 |
| 5.2.2 实验仪器与设备 | 第63-64页 |
| 5.3 实验方法 | 第64-70页 |
| 5.3.1 珊瑚菌多糖抗氧化活性研究 | 第64-66页 |
| 5.3.2 珊瑚菌多糖对MCF-7 及Hep G-2 抗肿瘤活性的研究 | 第66页 |
| 5.3.3 珊瑚菌多糖对昆明小鼠淋巴细胞增殖作用 | 第66-67页 |
| 5.3.4 珊瑚菌多糖对小鼠腹腔巨噬细胞RAW264.7 的作用 | 第67-68页 |
| 5.3.5 RT-PCR法测珊瑚菌多糖对RAW264.7 IL-6 及TNF-α 基因表达的影响 | 第68-70页 |
| 5.4 实验结果与讨论 | 第70-82页 |
| 5.4.1 珊瑚菌多糖的抗氧化活性 | 第70-72页 |
| 5.4.2 珊瑚菌多糖对MCF-7 及Hep G-2 抗肿瘤活性的研究 | 第72-75页 |
| 5.4.3 珊瑚菌多糖对小鼠脾脏淋巴细胞的增殖作用 | 第75-77页 |
| 5.4.4 珊瑚菌多糖对小鼠腹腔巨噬细胞RAW264.7 的作用 | 第77-79页 |
| 5.4.5 RT-PCR法测定珊瑚菌多糖对RAW264.7 IL-6 及TNF-α 基因表达mRNA的影响 | 第79-82页 |
| 5.5 本章小结 | 第82-83页 |
| 结论与展望 | 第83-86页 |
| 结论 | 第83-84页 |
| 创新性 | 第84-85页 |
| 展望 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-95页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第95-96页 |
| 致谢 | 第96-97页 |
| 附件 | 第97页 |
