| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略表 | 第8-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-24页 |
| 1 黑色素细胞 | 第13-15页 |
| 1.1 黑色素细胞的产生 | 第13-14页 |
| 1.2 黑色素细胞的发育 | 第14页 |
| 1.3 黑色素细胞的生物学特性 | 第14-15页 |
| 1.4 黑色素细胞的生长因子 | 第15页 |
| 2 黑色素 | 第15-17页 |
| 2.1 黑色素合成过程 | 第15-16页 |
| 2.2 黑色素的传递 | 第16-17页 |
| 3 黑色素生成调控机理 | 第17-20页 |
| 3.1 α-促黑激素(α-MSH)信号通路 | 第18-19页 |
| 3.2 Wnt/β-catenin信号通路 | 第19页 |
| 3.3 SCF/c-kit信号通路 | 第19-20页 |
| 4 黑色素合成抑制剂研究进展 | 第20-21页 |
| 4.1 酪氨酸酶催化活性直接抑制剂 | 第20页 |
| 4.2 促进酪氨酸酶的降解 | 第20-21页 |
| 4.3 通过MITF抑制酪氨酸酶基因表达 | 第21页 |
| 5 茶叶提取物对黑色素生成的作用研究 | 第21-22页 |
| 5.1 茶叶提取物抑制酪氨酸酶活性 | 第21页 |
| 5.2 茶叶提取物抑制黑色素形成 | 第21-22页 |
| 6 研究目的与意义 | 第22-23页 |
| 7 技术路线 | 第23-24页 |
| 第二章 茶儿茶素对B16F10细胞内黑色素生成的抑制作用 | 第24-33页 |
| 1 材料与方法 | 第24-26页 |
| 1.1 材料与仪器 | 第24-25页 |
| 1.1.1 材料与试剂 | 第24-25页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第25页 |
| 1.2 试验方法 | 第25-26页 |
| 1.2.1 细胞培养和传代 | 第25页 |
| 1.2.2 细胞形态的观察 | 第25页 |
| 1.2.3 细胞增殖率的测定 | 第25-26页 |
| 1.2.4 细胞内酪氨酸酶活性的测定 | 第26页 |
| 1.2.5 细胞内黑色素含量的测定 | 第26页 |
| 1.2.6 数据分析 | 第26页 |
| 2 结果与分析 | 第26-30页 |
| 2.1 EGCG、GCG、ECG和熊果苷对细胞形态的影响 | 第26-27页 |
| 2.2 EGCG、GCG、ECG和熊果苷对增殖率的影响 | 第27页 |
| 2.3 EGCG、GCG、ECG和熊果苷对酪氨酸酶活性的影响 | 第27-30页 |
| 2.4 EGCG、GCG、ECG和熊果苷对黑色素生成量的影响 | 第30页 |
| 3 讨论 | 第30-32页 |
| 4 结论 | 第32-33页 |
| 第三章 茶儿茶素对 B16F10 细胞内黑色素生成相关基因的调控 | 第33-40页 |
| 1 试验材料与方法 | 第33-37页 |
| 1.1 材料与仪器 | 第33-34页 |
| 1.1.1 材料与试剂 | 第33-34页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第34页 |
| 1.2 试验方法 | 第34-37页 |
| 1.2.1 细胞培养 | 第34页 |
| 1.2.2 RNA提取与检测 | 第34-35页 |
| 1.2.3 cDNA第一条链的合成 | 第35-36页 |
| 1.2.4 引物设计 | 第36页 |
| 1.2.5 PCR检测mRNA相对表达量 | 第36-37页 |
| 1.2.6 数据统计 | 第37页 |
| 2 结果与分析 | 第37-39页 |
| 2.1 总RNA完整性鉴定 | 第37-38页 |
| 2.2 黑色素生成相关基因的表达 | 第38-39页 |
| 3 讨论 | 第39页 |
| 4 结论 | 第39-40页 |
| 第四章 茶儿茶素对 B16F10 细胞内cAMP浓度及黑色素生成相关蛋白表达的影响 | 第40-51页 |
| 1 材料与方法 | 第40-46页 |
| 1.1 材料与仪器 | 第40-42页 |
| 1.1.1 材料与试剂 | 第40-41页 |
| 1.1.2 主要仪器 | 第41页 |
| 1.1.3 工作液配制 | 第41-42页 |
| 1.2 cAMPElisa试剂盒检测cAMP浓度 | 第42-44页 |
| 1.2.1 细胞培养及上清液收集 | 第42-43页 |
| 1.2.2 检测前准备工作 | 第43页 |
| 1.2.3 洗涤方法 | 第43页 |
| 1.2.4 操作步骤 | 第43-44页 |
| 1.3 Western-blot检测B16F10细胞内黑色素生成相关蛋白的表达 | 第44-46页 |
| 1.3.1 蛋白的提取与检测 | 第44页 |
| 1.3.2 Wstern-blot检测蛋白表达步骤 | 第44-46页 |
| 1.3.3 数据统计 | 第46页 |
| 2 结果与分析 | 第46-50页 |
| 2.1 不同处理对cAMP水平的影响 | 第46-47页 |
| 2.1.1 构建cAMP标准曲线模型 | 第46-47页 |
| 2.1.2 不同处理下B16F10细胞中cAMP的浓度 | 第47页 |
| 2.2 不同处理对黑色素生成相关蛋白表达的影响 | 第47-50页 |
| 3 讨论 | 第50页 |
| 4 结论 | 第50-51页 |
| 第五章 全文总结 | 第51-53页 |
| 1 主要研究成果 | 第51-52页 |
| 1.1 EGCG、ECG和GCG对黑色素生成的生物学抑制作用 | 第51页 |
| 1.2 EGCG、ECG和GCG下调黑色素生成相关基因的表达 | 第51页 |
| 1.3 EGCG、ECG和GCG下调黑色素生成相关蛋白的表达 | 第51-52页 |
| 2 主要创新点 | 第52页 |
| 3 展望 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 作者简介 | 第61页 |
