| 摘要 | 第8-10页 |
| 英文摘要 | 第10-12页 |
| 1 前言 | 第13-21页 |
| 1.1 立题背景 | 第13页 |
| 1.2 生物膜 | 第13-17页 |
| 1.2.1 生物膜的形成 | 第13-15页 |
| 1.2.2 生物膜的危害及控制方法 | 第15-16页 |
| 1.2.3 生物膜检测方法 | 第16-17页 |
| 1.3 苯乳酸 | 第17-19页 |
| 1.3.1 苯乳酸的理化性质 | 第17页 |
| 1.3.2 苯乳酸的抑菌作用 | 第17-18页 |
| 1.3.3 苯乳酸的来源 | 第18-19页 |
| 1.3.4 苯乳酸在食品中应用 | 第19页 |
| 1.4 研究的意义和内容 | 第19-21页 |
| 1.4.1 研究的意义和目的 | 第19-20页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第20-21页 |
| 2 材料和方法 | 第21-33页 |
| 2.1 材料与试剂 | 第21页 |
| 2.2 仪器与设备 | 第21-22页 |
| 2.3 试验方法 | 第22-33页 |
| 2.3.1 苯乳酸对E.cloacae C4和E.faecalis R612-Z1的抑菌机制 | 第22-25页 |
| 2.3.2 转录组测序 | 第25页 |
| 2.3.3 苯乳酸对生物膜的抑制作用 | 第25-31页 |
| 2.3.4 苯乳酸对生物膜内菌体的杀菌作用 | 第31-32页 |
| 2.3.5 数据统计 | 第32-33页 |
| 3 结果与分析 | 第33-73页 |
| 3.1 苯乳酸对E.cloacaeC4和E.faecalisR612-Z1抑菌机制 | 第33-44页 |
| 3.1.1 最小抑菌浓度(MIC) | 第33页 |
| 3.1.2 细菌活性分析 | 第33-34页 |
| 3.1.3 细菌微观结构变化 | 第34-37页 |
| 3.1.4 细胞膜渗透性 | 第37-41页 |
| 3.1.5 流式细胞仪测定结果 | 第41-42页 |
| 3.1.6 细胞膜电势能变化 | 第42-43页 |
| 3.1.7 ATR-FTIR结果分析 | 第43-44页 |
| 3.2 转录组 | 第44-52页 |
| 3.2.1 测序数据质量评估 | 第44-46页 |
| 3.2.2 差异基因表达分析 | 第46-48页 |
| 3.2.3 差异基因GO富集分析 | 第48-50页 |
| 3.2.4 差异基因的KEGG富集分析 | 第50-52页 |
| 3.3 苯乳酸对生物膜的抑制作用 | 第52-66页 |
| 3.3.1 生物菌膜形成量 | 第52-54页 |
| 3.3.2 细菌表面特性 | 第54-55页 |
| 3.3.3 苯乳酸抑制过程中菌数变化 | 第55-56页 |
| 3.3.4 细菌及生物膜微观变化 | 第56-58页 |
| 3.3.5 膜厚度及结构变化 | 第58-60页 |
| 3.3.6 胞外多糖含量变化 | 第60-62页 |
| 3.3.7 生物膜蛋白含量 | 第62-64页 |
| 3.3.8 目的基因相对表达量 | 第64-65页 |
| 3.3.9 苯乳酸对钢板表面生长生物膜的抑制作用 | 第65-66页 |
| 3.4 苯乳酸对生物膜的杀菌作用 | 第66-73页 |
| 3.4.1 不同浓度的苯乳酸对生物膜的杀菌效果 | 第66-68页 |
| 3.4.2 不同浓度的苯乳酸处理后生物膜形态变化 | 第68-70页 |
| 3.4.3 苯乳酸对钢板表面生长生物膜的杀菌作用 | 第70-73页 |
| 4 讨论 | 第73-80页 |
| 4.1 PLA对食源性腐败菌的抑菌机理 | 第73-75页 |
| 4.2 转录组学分析 | 第75-76页 |
| 4.3 PLA对细菌形成生物膜的作用 | 第76-78页 |
| 4.4 PLA对生物膜内细菌的杀菌作用 | 第78-80页 |
| 5 结论 | 第80-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-94页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第94页 |