| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 第1章 引言 | 第11-18页 |
| 1.1 食物过敏 | 第11-12页 |
| 1.2 鱼类过敏概况 | 第12-14页 |
| 1.2.1 儿童和成年人中患病率 | 第12-13页 |
| 1.2.2 临床症状和暴露途径 | 第13-14页 |
| 1.3 鱼类过敏原 | 第14-15页 |
| 1.3.1 主要过敏原小清蛋白 | 第14页 |
| 1.3.2 PV抗原表位分析 | 第14-15页 |
| 1.3.3 其他过敏原 | 第15页 |
| 1.4 加工方式对鱼类过敏原的影响 | 第15-16页 |
| 1.5 本研究的目的和意义 | 第16-18页 |
| 第2章 材料与方法 | 第18-25页 |
| 2.1 材料 | 第18-20页 |
| 2.1.1 原料 | 第18页 |
| 2.1.2 血清 | 第18页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第18-19页 |
| 2.1.4 主要试剂 | 第19-20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-25页 |
| 2.2.1 鲢鱼小清蛋白纯化和鉴定 | 第20页 |
| 2.2.2 磷酸化条件的建立 | 第20页 |
| 2.2.3 Tricine-SDS-PAGE | 第20-21页 |
| 2.2.4 免疫印迹 | 第21页 |
| 2.2.5 圆二色谱分析 | 第21页 |
| 2.2.6 扫描电镜分析 | 第21-22页 |
| 2.2.7 表面疏水性测定 | 第22页 |
| 2.2.8 树突状细胞对磷酸化产物的吞噬作用 | 第22页 |
| 2.2.9 模拟胃液消化 | 第22页 |
| 2.2.10 灰星鲨小清蛋白分离纯化 | 第22-23页 |
| 2.2.11 质谱鉴定 | 第23页 |
| 2.2.12 双向电泳 | 第23页 |
| 2.2.13 致敏性分析 | 第23页 |
| 2.2.14 热变性曲线分析 | 第23页 |
| 2.2.15 热稳定性和pH稳定性分析 | 第23-24页 |
| 2.2.16 胃蛋白酶和胰蛋白酶消化稳定性分析 | 第24页 |
| 2.2.17 结晶、X-射线衍射数据收集和结构测定 | 第24页 |
| 2.2.18 蛋白浓度测定 | 第24-25页 |
| 第3章 结果与分析 | 第25-49页 |
| 3.1 鲢PV磷酸化条件的建立及性质分析 | 第25-34页 |
| 3.1.1 鲢鱼小清蛋白的分离纯化 | 第25页 |
| 3.1.2 样品质量比、温度、时间对磷酸化反应的影响 | 第25-27页 |
| 3.1.3 磷酸化反应产物聚合特性分析 | 第27-28页 |
| 3.1.4 IgG和IgE结合活性分析 | 第28-29页 |
| 3.1.5 树突状细胞对磷酸化反应产物的吞噬作用 | 第29-30页 |
| 3.1.6 磷酸化反应产物模拟胃液消化 | 第30-32页 |
| 3.1.7 磷酸化反应对结构的影响 | 第32-34页 |
| 3.2 鲨鱼小清蛋白的分离纯化、性质分析及磷酸化对其影响 | 第34-49页 |
| 3.2.1 鲨鱼小清蛋白的分离纯化 | 第34-35页 |
| 3.2.2 质谱鉴定和双向电泳分析 | 第35-36页 |
| 3.2.3 SPVs致敏性和性质分析 | 第36-42页 |
| 3.2.4 SPVs晶体结构分析 | 第42-47页 |
| 3.2.5 磷酸化反应对SPVs性质和结构的影响 | 第47-49页 |
| 第4章 讨论 | 第49-56页 |
| 4.1 鲢PV磷酸化条件的建立及性质分析 | 第49-51页 |
| 4.1.1 磷酸化反应对鲢PV免疫学性质影响 | 第49-50页 |
| 4.1.2 磷酸化反应对鲢PV结构的影响 | 第50-51页 |
| 4.2 鲨鱼小清蛋白亚型分离纯化、性质分析及磷酸化对其影响 | 第51-56页 |
| 4.2.1 SPVs分离纯化及质谱鉴定 | 第51-52页 |
| 4.2.2 SPVs性质与结构分析 | 第52-53页 |
| 4.2.3 SPVs热稳定性和pH稳定性分析 | 第53-54页 |
| 4.2.4 SPVs模拟胃肠液消化稳定性分析 | 第54页 |
| 4.2.5 SPVs磷酸化反应分析 | 第54-56页 |
| 第5章 结论与展望 | 第56-57页 |
| 5.1 结论 | 第56页 |
| 5.2 展望 | 第56-57页 |
| 致谢 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-66页 |
| 在学期间科研成果情况 | 第66页 |
