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植物内生真菌转化甘草酸生成单葡萄糖醛酸基甘草次酸

摘要第4-6页
ABSTRACT第6-7页
缩略词第13-14页
第1章 绪论第14-25页
    1.1 甘草酸及其衍生物结构、活性及应用第14-17页
        1.1.1 GL及其衍生物的结构第14-15页
        1.1.2 GL及其衍生物的活性与应用第15-16页
        1.1.3 单葡萄糖醛酸基甘草次酸(GAMG)的制备方法第16-17页
    1.2 β-D-葡萄糖醛酸苷酶第17-19页
        1.2.1 β-D-葡萄糖醛酸苷酶的来源第17页
        1.2.2 β-D-葡萄糖醛酸苷酶的催化机理第17-18页
        1.2.3 β-D-葡萄糖醛酸苷酶的应用第18-19页
    1.3 植物内生真菌是有待开发的生物催化剂宝库第19-22页
    1.4 东乡野生稻及其内生菌简介第22-23页
    1.5 本课题研究意义及主要内容第23-25页
        1.5.1 研究意义第23页
        1.5.2 研究的主要内容第23-25页
第2章 GL及GAMG定量分析方法的建立第25-31页
    2.1 实验材料第25-27页
        2.1.1 实验试剂第25-26页
        2.1.2 实验仪器第26页
        2.1.3 色谱条件第26页
        2.1.4 实验方法第26-27页
            2.1.4.1 标准品溶液的制备第26页
            2.1.4.2 生物转化样品溶液的制备第26-27页
    2.2 实验结果第27-30页
        2.2.1 GL和GAMG标准曲线的绘制第27-28页
        2.2.2 精密度实验第28页
        2.2.3 加样回收率第28-30页
        2.2.4 最小检测限第30页
    2.3 本章小结第30-31页
第3章 高效转化GL生成GAMG的菌株筛选及鉴定第31-45页
    3.1 实验材料第31-33页
        3.1.1 供试菌株第31页
        3.1.2 培养基第31-32页
        3.1.3 实验试剂第32-33页
        3.1.4 实验仪器第33页
    3.2 实验方法第33-37页
        3.2.1 平板初筛第33-34页
        3.2.2 摇瓶复筛第34页
        3.2.3 薄层层析检测转化产物第34页
        3.2.4 超高效液相色谱法检测转化产物第34页
        3.2.5 生物转化第34-35页
        3.2.6 主产物的分离纯化及结构鉴定第35页
            3.2.6.1 主产物的分离纯化第35页
            3.2.6.2 主产物的结构鉴定第35页
        3.2.7 转化率和产率的计算第35-36页
        3.2.8 高效转化菌株的鉴定第36-37页
            3.2.8.1 菌落形态学观察第36页
            3.2.8.2 光学显微镜形态观察第36页
            3.2.8.3 菌株的分子生物学鉴定第36-37页
    3.3 研究结果第37-44页
        3.3.1 平板初筛结果第37-38页
        3.3.2 摇瓶复筛结果第38-39页
            3.3.2.1 薄层层析(TLC)法检测转化产物第38-39页
            3.3.2.2 UPLC法检测菌株的转化产物第39页
        3.3.3 主产物的分离纯化及鉴定第39-42页
            3.3.3.1 主产物的分离纯化第39-42页
            3.3.3.2 主产物的鉴定第42页
        3.3.4 高效转化菌株S108的鉴定第42-44页
            3.3.4.1 菌株S108的形态学鉴定第43页
            3.3.4.2 菌株S108的分子生物学鉴定第43-44页
    3.4 本章小结第44-45页
第4章 菌株S108产酶条件及酶学性质的初步研究第45-59页
    4.1 实验材料第45-47页
        4.1.1 培养基第45-46页
        4.1.2 实验仪器第46页
        4.1.3 实验试剂第46-47页
    4.2 实验方法第47-49页
        4.2.1 酶活力的测定方法第47-48页
        4.2.2 酶的粗提取第48页
        4.2.3 粗酶酶学性质的研究第48-49页
            4.2.3.1 温度及pH对酶活力的影响第48页
            4.2.3.2 金属离子及试剂对酶活力的影响第48-49页
    4.3 研究结果第49-58页
        4.3.1 β-D-葡萄糖醛酸苷酶的表达方式第49-50页
        4.3.2 培养基组分及培养条件对产酶的影响第50-54页
            4.3.2.1 底物浓度对产酶的影响第50页
            4.3.2.2 不同氮源对产酶的影响第50-51页
            4.3.2.3 初始pH对产酶的影响第51-52页
            4.3.2.4 培养温度对产酶的影响第52-53页
            4.3.2.5 转速对产酶的影响第53页
            4.3.2.6 接种量对产酶的影响第53-54页
        4.3.3 酶学性质的研究第54-58页
            4.3.3.1 温度对粗酶酶活力的影响第55-56页
            4.3.3.2 pH对粗酶酶活力的影响第56-57页
            4.3.3.3 金属离子及试剂对粗酶酶活力的影响第57-58页
    4.4 本章小结第58-59页
第5章 菌株S108制备GAMG的工艺优化第59-78页
    5.1 研究材料与方法第59-62页
        5.1.1 供试菌株第59页
        5.1.2 培养基第59-60页
        5.1.3 实验试剂第60-61页
        5.1.4 实验仪器第61页
        5.1.5 色谱条件第61页
        5.1.6 GAMG产率的计算第61-62页
    5.2 研究结果第62-77页
        5.2.1 单因素实验第62-70页
            5.2.1.1 发酵时间对GAMG产率的影响第62-63页
            5.2.1.2 底物浓度对GAMG产率的影响第63页
            5.2.1.3 不同氮源对GAMG产率的影响第63-64页
            5.2.1.4 硝酸铵对GAMG产率的影响第64-65页
            5.2.1.5 磷酸二氢钾对GAMG产率的影响第65-66页
            5.2.1.6 氯化钠对GAMG产率的影响第66页
            5.2.1.7 七水硫酸镁对GAMG产率的影响第66-67页
            5.2.1.8 温度对GAMG产率的影响第67-68页
            5.2.1.9 初始pH对GAMG产率的影响第68页
            5.2.1.10 转速对GAMG产率的影响第68-69页
            5.2.1.11 接种量对GAMG产率的影响第69-70页
        5.2.2 Plackett–Burman实验设计及结果第70-73页
            5.2.2.1 培养基成分PB实验设计及结果第70-72页
            5.2.2.2 培养条件PB实验设计及结果第72-73页
        5.2.3 最陡爬坡实验设计及结果第73-74页
        5.2.4 Box–Behnken实验设计及结果第74-77页
    5.3 本章小结第77-78页
第6章 结论与展望第78-80页
    6.1 结论第78-79页
    6.2 展望第79-80页
参考文献第80-87页
附录:化合物的谱图第87-89页
攻读学位期间的研究成果第89-90页
致谢第90页

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