| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-22页 |
| 1.1 苹果采后主要病害及防治方法 | 第13-18页 |
| 1.1.1 苹果产业状况 | 第13页 |
| 1.1.2 苹果主要采后病害 | 第13页 |
| 1.1.3 苹果采后病害的主要控制方法 | 第13-16页 |
| 1.1.4 拮抗酵母提高采后水果抗病性的机制研究 | 第16-18页 |
| 1.2 展青霉素的概述 | 第18-19页 |
| 1.2.1 展青霉素的结构和性质 | 第18-19页 |
| 1.2.2 展青霉素的毒性及限量指标 | 第19页 |
| 1.3 拮抗酵母控制展青霉素的研究进展 | 第19-21页 |
| 1.4 本课题研究的目的、意义及内容 | 第21-22页 |
| 第二章 拟粉红锁掷孢酵母对苹果采后青霉病的控制 | 第22-28页 |
| 2.1 引言 | 第22页 |
| 2.2 材料和方法 | 第22-24页 |
| 2.2.1 主要仪器 | 第22页 |
| 2.2.2 水果 | 第22-23页 |
| 2.2.3 拮抗酵母 | 第23页 |
| 2.2.4 病原菌 | 第23页 |
| 2.2.5 不同拮抗酵母控制苹果采后青霉病的生防效力 | 第23页 |
| 2.2.6 S. pararoseus Y16控制苹果采后青霉病的生防效力 | 第23-24页 |
| 2.2.7 数据统计与分析 | 第24页 |
| 2.3 结果与分析 | 第24-27页 |
| 2.3.1 不同拮抗酵母对苹果采后青霉病的生防效力 | 第24-25页 |
| 2.3.2 S. pararoseus Y16对苹果采后青霉病的生防效力 | 第25-27页 |
| 2.4 讨论 | 第27-28页 |
| 第三章 拟粉红锁掷孢酵母控制苹果青霉病的生理机制 | 第28-43页 |
| 3.1 引言 | 第28页 |
| 3.2 材料和方法 | 第28-31页 |
| 3.2.1 主要仪器 | 第28页 |
| 3.2.2 水果 | 第28页 |
| 3.2.3 拮抗酵母 | 第28-29页 |
| 3.2.4 病原菌 | 第29页 |
| 3.2.5 S. pararoseus Y16对扩展青霉在PDA和PDB培养基中的影响 | 第29页 |
| 3.2.6 S. pararoseus Y16在苹果果实伤口处的生长动态 | 第29页 |
| 3.2.7 扫描电镜观察苹果伤口处S. pararoseus Y16和P. expansum的生长 | 第29-30页 |
| 3.2.8 S. pararoseus Y16对扩展青霉还原糖吸收的影响 | 第30页 |
| 3.2.9 S. pararoseus Y16对扩展青霉菌体内N-乙酰葡糖胺含量的影响 | 第30页 |
| 3.2.10 S. pararoseus Y16对苹果诱导抗性生理机制的影响 | 第30-31页 |
| 3.2.11 数据统计与分析 | 第31页 |
| 3.3 结果与分析 | 第31-41页 |
| 3.3.1 S. pararoseus Y16对扩展青霉在PDA培养基中的影响 | 第31-32页 |
| 3.3.2 S. pararoseus Y16对扩展青霉在PDB培养基中的影响 | 第32-33页 |
| 3.3.3 S. pararoseus Y16在苹果果实伤口处的生长动态 | 第33-35页 |
| 3.3.4 扫描电镜观察果实伤口处S. pararoseus Y16和P. expansum的生长 | 第35页 |
| 3.3.5 S. pararoseus Y16对扩展青霉还原糖吸收的影响 | 第35-36页 |
| 3.3.6 S. pararoseus Y16对扩展青霉菌体内N-乙酰葡糖胺含量的影响 | 第36-37页 |
| 3.3.7 S. pararoseus Y16对苹果PPO活性的影响 | 第37-38页 |
| 3.3.8 S. pararoseus Y16对苹果PO D活性的影响 | 第38页 |
| 3.3.9 S. pararoseus Y16对苹果C AT活性的影响 | 第38-39页 |
| 3.3.10 S. pararoseus Y16对苹果PAL活性的影响 | 第39页 |
| 3.3.11 S. pararoseus Y16对苹果总酚含量的影响 | 第39-40页 |
| 3.3.12 S. pararoseus Y16对苹果类黄酮含量的影响 | 第40-41页 |
| 3.4 讨论 | 第41-43页 |
| 第四章 拟粉红锁掷孢酵母对苹果抗性相关基因表达的影响 | 第43-48页 |
| 4.1 引言 | 第43页 |
| 4.2 材料和试剂 | 第43-45页 |
| 4.2.1 主要仪器设备 | 第43页 |
| 4.2.2 主要试剂 | 第43页 |
| 4.2.3 拮抗酵母 | 第43-44页 |
| 4.2.4 苹果果实组织样品的制备 | 第44页 |
| 4.2.5 引物设计 | 第44-45页 |
| 4.2.6 果实伤口处总RNA的提取 | 第45页 |
| 4.2.7 cDNA的合成 | 第45页 |
| 4.2.8 RT-qPCR测定S. pararoseus Y16对苹果抗性相关基因表达的影响 | 第45页 |
| 4.3 结果与分析 | 第45-47页 |
| 4.3.1 S. pararoseus Y16对苹果抗性相关基因表达的影响 | 第45-47页 |
| 4.4 讨论 | 第47-48页 |
| 第五章 拟粉红锁掷孢酵母对展青霉素的降解及其机制研究 | 第48-60页 |
| 5.1 引言 | 第48页 |
| 5.2 材料和方法 | 第48-52页 |
| 5.2.1 主要仪器 | 第48页 |
| 5.2.2 试剂 | 第48-49页 |
| 5.2.3 拮抗酵母 | 第49页 |
| 5.2.4 病原菌 | 第49页 |
| 5.2.5 HPLC-DAD检测PAT的条件 | 第49页 |
| 5.2.6 S. pararoseus Y16对苹果伤口处PAT的控制作用 | 第49页 |
| 5.2.7 S. pararoseus Y16在体外对PAT的降解作用 | 第49-50页 |
| 5.2.8 S. pararoseus Y16降解PAT的机制 | 第50-51页 |
| 5.2.9 S. pararoseus Y16降解PAT产物安全性研究 | 第51-52页 |
| 5.2.10 数据分析 | 第52页 |
| 5.3 结果与分析 | 第52-58页 |
| 5.3.1 S. pararoseus Y16对苹果伤口处PAT的控制作用 | 第52-53页 |
| 5.3.2 S. pararoseus Y16在体外对PAT的降解作用 | 第53页 |
| 5.3.3 S. pararoseus Y16细胞壁对PAT的吸附作用 | 第53-54页 |
| 5.3.4 S. pararoseus Y16对PAT的吸收作用 | 第54-55页 |
| 5.3.5 S. pararoseus Y16细胞外代谢物对PAT的降解作用 | 第55页 |
| 5.3.6 PAT刺激下S. pararoseus Y16产生的外代谢物对PAT的降解作用 | 第55-56页 |
| 5.3.7 环己酰亚胺对PAT降解的影响 | 第56-57页 |
| 5.3.8 S. pararoseus Y16胞内酶对PAT的降解作用 | 第57页 |
| 5.3.9 S. pararoseus Y16降解PAT产物安全性研究 | 第57-58页 |
| 5.4 讨论 | 第58-60页 |
| 第六章 拟粉红锁掷孢酵母降解展青霉素的蛋白质组学研究 | 第60-72页 |
| 6.1 引言 | 第60页 |
| 6.2 材料和方法 | 第60-66页 |
| 6.2.1 主要仪器和试剂 | 第60页 |
| 6.2.2 拮抗酵母 | 第60页 |
| 6.2.3 总蛋白的提取 | 第60-62页 |
| 6.2.4 双向电泳 | 第62-65页 |
| 6.2.5 凝胶图谱分析 | 第65页 |
| 6.2.6 质谱实验操作流程 | 第65页 |
| 6.2.7 蛋白鉴定 | 第65-66页 |
| 6.3 结果分析 | 第66-70页 |
| 6.3.1 拟粉红锁掷孢酵母蛋白质双向电泳图 | 第66-67页 |
| 6.3.2 PAT诱导S. pararoseus Y16蛋白差异点质谱鉴定结果 | 第67-69页 |
| 6.3.3 差异蛋白质的GO分析 | 第69-70页 |
| 6.4 讨论 | 第70-72页 |
| 第七章 总结与展望 | 第72-74页 |
| 7.1 主要结论 | 第72页 |
| 7.2 展望 | 第72-74页 |
| 参考文献 | 第74-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |
| 硕士期间学术研究成果 | 第84页 |
