| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-21页 |
| 1.1 小麦麸皮研究现状与深度开发前景 | 第13页 |
| 1.2 小麦麸皮 | 第13-16页 |
| 1.2.1 小麦麸皮来源及结构组成 | 第13-14页 |
| 1.2.2 小麦麸皮的主要营养成分及利用 | 第14-16页 |
| 1.3 多酚化合物的抗氧化活性 | 第16-19页 |
| 1.3.1 氧化损伤及其对机体的危害 | 第16-17页 |
| 1.3.2 抗氧化机制 | 第17-18页 |
| 1.3.3 抗氧化剂 | 第18页 |
| 1.3.4 多酚化合物及其抗氧化机制 | 第18-19页 |
| 1.3.5 阿魏酸及其抗氧化活性 | 第19页 |
| 1.4 立题意义及研究内容 | 第19-21页 |
| 1.4.1 立题意义 | 第19-20页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第20-21页 |
| 第二章 小麦麸皮多酚化合物的提取及富集 | 第21-33页 |
| 2.1 前言 | 第21-22页 |
| 2.2 材料与设备 | 第22页 |
| 2.2.1 实验材料与试剂 | 第22页 |
| 2.2.2 主要仪器与设备 | 第22页 |
| 2.3 实验方法 | 第22-25页 |
| 2.3.1 总酚含量的测定 | 第22-23页 |
| 2.3.2 DPPH?自由基清除测定方法（96孔板法） | 第23-24页 |
| 2.3.3 小麦麸皮粉的制备 | 第24页 |
| 2.3.4 提取溶剂的筛选 | 第24页 |
| 2.3.5 小麦麸皮多酚粗提物的制备 | 第24页 |
| 2.3.6 麦麸多酚化合物的富集-大孔吸附树脂的筛选 | 第24-25页 |
| 2.3.7 数据统计分析 | 第25页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第25-31页 |
| 2.4.1 没食子酸标准曲线 | 第25-26页 |
| 2.4.2 Trolox标准曲线 | 第26页 |
| 2.4.3 DPPH?实验测定 | 第26-27页 |
| 2.4.4 不同提取溶剂筛选 | 第27-28页 |
| 2.4.5 大孔吸附树脂静态吸附实验 | 第28-29页 |
| 2.4.6 大孔吸附树脂静态吸附曲线 | 第29-30页 |
| 2.4.7 大孔吸附树脂动态吸附曲线 | 第30-31页 |
| 2.5 本章小结 | 第31-33页 |
| 第三章 超高效液相色谱法鉴定小麦麸皮中多酚化合物 | 第33-41页 |
| 3.1 前言 | 第33页 |
| 3.2 材料与设备 | 第33-34页 |
| 3.2.1 实验材料与试剂 | 第33页 |
| 3.2.2 主要仪器与设备 | 第33-34页 |
| 3.3 实验方法 | 第34-35页 |
| 3.3.1 混合标准溶液的制备 | 第34页 |
| 3.3.2 样品前处理 | 第34页 |
| 3.3.3 UPLC-TQD条件 | 第34页 |
| 3.3.4 质谱条件 | 第34-35页 |
| 3.3.5 统计学分析 | 第35页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第35-39页 |
| 3.4.1 UPLC-TQD条件的确定 | 第35页 |
| 3.4.2 质谱条件的确定 | 第35-36页 |
| 3.4.3 标准品UPLC-TQD检测结果 | 第36-38页 |
| 3.4.4 标准品线性关系 | 第38页 |
| 3.4.5 UPLC-TQD定量分析麦麸多酚化合物 | 第38-39页 |
| 3.5 本章小结 | 第39-41页 |
| 第四章 麦麸多酚化合物细胞抗氧化活性研究 | 第41-59页 |
| 4.1 前言 | 第41页 |
| 4.2 实验材料与仪器 | 第41-42页 |
| 4.2.1 实验材料与主要试剂 | 第41-42页 |
| 4.2.2 主要仪器及设备 | 第42页 |
| 4.3 实验方法 | 第42-46页 |
| 4.3.1 HEK293细胞培养 | 第42-43页 |
| 4.3.2 MTT法检测细胞存活率 | 第43页 |
| 4.3.3 HEK293氧化损伤细胞模型的建立 | 第43-44页 |
| 4.3.4 HEK293细胞内ROS的测定 | 第44页 |
| 4.3.5 HEK293细胞形态观察 | 第44页 |
| 4.3.6 HEK293细胞LDH、SOD、CAT、GSH-PX、及MDA的检测 | 第44-45页 |
| 4.3.7 流式细胞仪检测HEK293细胞凋亡 | 第45-46页 |
| 4.3.8 统计学分析 | 第46页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第46-57页 |
| 4.4.1 HEK293细胞氧化损伤模型的建立 | 第46-49页 |
| 4.4.2 麦麸提取物对HEK293细胞存活率的影响 | 第49页 |
| 4.4.3 麦麸多酚化合物对H2O2诱导的HEK293细胞存活率的影响 | 第49-50页 |
| 4.4.4 麦麸多酚化合物对H2O2诱导的HEK293细胞内ROS的影响 | 第50-51页 |
| 4.4.5 WBPE-N9-4 对H2O2诱导的HEK293细胞形态影响 | 第51-53页 |
| 4.4.6 WBPE-N9-4 对HEK293细胞LDH、SOD、CAT、GPX、及MDA的影响 | 第53-54页 |
| 4.4.7 流式细胞仪检测WBPE-N9-4 对HEK293细胞凋亡的影响 | 第54-57页 |
| 4.5 本章小结 | 第57-59页 |
| 第五章 麦麸多酚化合物体内抗氧化活性研究 | 第59-69页 |
| 5.1 前言 | 第59页 |
| 5.2 材料与方法 | 第59-60页 |
| 5.2.1 实验动物 | 第59页 |
| 5.2.2 实验材料与主要试剂 | 第59-60页 |
| 5.2.3 主要仪器与设备 | 第60页 |
| 5.3 实验方法 | 第60-62页 |
| 5.3.1 实验饲料 | 第60页 |
| 5.3.2 动物分组及喂养条件 | 第60-61页 |
| 5.3.3 昆明小鼠体重及饲料消耗情况 | 第61页 |
| 5.3.4 测试血液及组织样品采集 | 第61页 |
| 5.3.5 血清相关生化指标检测 | 第61页 |
| 5.3.6 昆明小鼠肝脏、肾脏组织学观察 | 第61-62页 |
| 5.3.7 数据统计分析 | 第62页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第62-66页 |
| 5.4.1 WBPE-N9-4 对高脂昆明小鼠体重及饲料消耗的影响 | 第62-63页 |
| 5.4.2 不同分组中昆明小鼠内脏指标 | 第63-64页 |
| 5.4.3 昆明小鼠血清中TC、TG、HDL-C、LDL-C含量变化 | 第64页 |
| 5.4.4 昆明小鼠肝脏及肾脏组织切片观察 | 第64-66页 |
| 5.5 本章小结 | 第66-69页 |
| 主要结论与展望 | 第69-71页 |
| 主要结论 | 第69-70页 |
| 展望 | 第70-71页 |
| 论文创新点 | 第71-73页 |
| 致谢 | 第73-75页 |
| 参考文献 | 第75-83页 |
| 附录: 作者在攻读博士学位期间发表的论文 | 第83页 |
