| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 缩与表 | 第10-11页 |
| 第1章 绪论 | 第11-22页 |
| 1.1 研究背景 | 第11-14页 |
| 1.1.1 赭曲霉毒素简介 | 第11-13页 |
| 1.1.2 伏马毒素简介 | 第13-14页 |
| 1.2 核酸适配体的概述 | 第14-15页 |
| 1.2.1 核酸适配体的定义 | 第14页 |
| 1.2.2 核酸适配体的筛选—SELEX技术 | 第14-15页 |
| 1.2.3 核酸适配体的优势及应用 | 第15页 |
| 1.3 光子晶体材料简介 | 第15-18页 |
| 1.3.1 光子晶体的定义及制备方法 | 第15-17页 |
| 1.3.2 光子晶体的光学编码方法及特点 | 第17-18页 |
| 1.4 真菌毒素的检测方法及目前研究进展 | 第18-20页 |
| 1.4.1 薄层色谱法 | 第18页 |
| 1.4.2 高效液相色谱法 | 第18-19页 |
| 1.4.3 酶联免疫吸附法 | 第19页 |
| 1.4.4 其它常用方法 | 第19-20页 |
| 1.4.5 目前研究进展 | 第20页 |
| 1.5 本课题研究的目的、意义及内容 | 第20-22页 |
| 1.5.1 本课题研究的目的和意义 | 第20页 |
| 1.5.2 本课题的研究内容 | 第20-22页 |
| 第2章 二氧化硅光子晶体微球(SPCMs)的制备及其功能化研究 | 第22-29页 |
| 2.1 SPCMs的制备 | 第22-23页 |
| 2.1.1 试验材料及仪器 | 第22-23页 |
| 2.1.2 水相与油相溶液的配置 | 第23页 |
| 2.1.3 SPCMs的制作和保存 | 第23页 |
| 2.2 SPCMs的表征 | 第23-26页 |
| 2.2.1 结果与讨论 | 第23-26页 |
| 2.3 SPCMs载体的表面功能化方法研究 | 第26-28页 |
| 2.3.1 实验材料及仪器 | 第26页 |
| 2.3.2 不同修饰方法对SPCMs载体荧光背景的影响 | 第26-27页 |
| 2.3.3 不同GPTMS浓度修饰的SPCMs杂交反应后的荧光信号的影响 | 第27页 |
| 2.3.4 实验结果与讨论 | 第27-28页 |
| 2.4 本章总结 | 第28-29页 |
| 第3章 基于核酸适配体技术检测农产品中赭曲霉毒素A | 第29-43页 |
| 3.1 实验试剂与仪器 | 第30-32页 |
| 3.1.1 实验材料和试剂 | 第30-31页 |
| 3.1.2 核酸适配体序列 | 第31页 |
| 3.1.3 主要试剂的配制 | 第31页 |
| 3.1.4 主要实验仪器设备 | 第31-32页 |
| 3.2 OTA的定量检测方法 | 第32页 |
| 3.3 反应条件的优化 | 第32-33页 |
| 3.3.1 OTA-aptamer的浓度优化 | 第32页 |
| 3.3.2 荧光标记互补序列浓度优化 | 第32页 |
| 3.3.3 杂交条件的优化 | 第32-33页 |
| 3.3.4 OTA结合条件的优化 | 第33页 |
| 3.3.5 减小非特异性吸附的研究 | 第33页 |
| 3.4 谷物中赭曲霉毒素A的检测 | 第33-34页 |
| 3.4.1 标准曲线制作 | 第33-34页 |
| 3.4.2 特异性分析 | 第34页 |
| 3.4.3 回收率测定 | 第34页 |
| 3.5 实验结果与分析 | 第34-41页 |
| 3.5.1 OTA-核酸适配体的浓度优化 | 第34-35页 |
| 3.5.2 OTA-荧光标记互补序列浓度优化 | 第35-36页 |
| 3.5.3 杂交条件的优化 | 第36-37页 |
| 3.5.4 OTA结合条件的优化 | 第37-38页 |
| 3.5.5 减少非特异性吸附研究 | 第38页 |
| 3.5.6 标准曲线的制作 | 第38-40页 |
| 3.5.7 特异性分析 | 第40页 |
| 3.5.8 回收率测定 | 第40-41页 |
| 3.6 结果讨论 | 第41页 |
| 3.7 本章小结 | 第41-43页 |
| 第4章 农产品中真菌毒素的多重检测 | 第43-56页 |
| 4.1 试验材料及仪器 | 第44-45页 |
| 4.1.1 试验材料及试剂 | 第44页 |
| 4.1.2 核酸适配体序列 | 第44-45页 |
| 4.1.3 试验仪器 | 第45页 |
| 4.2 体系条件的优化 | 第45页 |
| 4.2.1 FB_1-核酸适配体的浓度优化 | 第45页 |
| 4.2.2 FITC标记的互补序列浓度优化 | 第45页 |
| 4.2.3 杂交条件的优化 | 第45页 |
| 4.3 农产品中OTA与FB_1的同时检测 | 第45-47页 |
| 4.3.1 标准曲线制作 | 第45-46页 |
| 4.3.2 多重特异性分析 | 第46页 |
| 4.3.3 回收率测定 | 第46页 |
| 4.3.4 ELISA方法比较 | 第46-47页 |
| 4.4 实验结果与分析 | 第47-54页 |
| 4.4.1 FB_1-aptamer的浓度优化 | 第47-48页 |
| 4.4.2 FB_1-荧光标记互补序列浓度优化 | 第48页 |
| 4.4.3 杂交条件的优化 | 第48-49页 |
| 4.4.4 多重标准曲线的制作 | 第49-51页 |
| 4.4.5 特异性分析 | 第51页 |
| 4.4.6 多重检测回收率测定 | 第51-53页 |
| 4.4.7 ELISA方法比较 | 第53-54页 |
| 4.5 结果讨论 | 第54-55页 |
| 4.6 本章小结 | 第55-56页 |
| 全文总结 | 第56-57页 |
| 论文创新点 | 第57-58页 |
| 展望 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-67页 |
| 在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第67-68页 |
| 致谢 | 第68页 |
