| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-23页 |
| 1.1 DHA研究概述 | 第11-15页 |
| 1.1.1 多不饱和脂肪酸 | 第11页 |
| 1.1.2 DHA性质 | 第11-12页 |
| 1.1.3 DHA生理功能 | 第12页 |
| 1.1.4 DHA的应用 | 第12-14页 |
| 1.1.4.1 DHA在医药行业中的应用 | 第12-13页 |
| 1.1.4.2 DHA在食品行业中的应用 | 第13页 |
| 1.1.4.3 DHA在饲料行业中的应用 | 第13-14页 |
| 1.1.5 DHA的来源 | 第14-15页 |
| 1.1.5.1 传统来源 | 第14页 |
| 1.1.5.2 新来源 | 第14-15页 |
| 1.2 裂殖壶菌发酵产DHA油脂简介 | 第15-19页 |
| 1.2.1 裂殖壶菌概况 | 第15-16页 |
| 1.2.2 裂殖壶菌安全性 | 第16-17页 |
| 1.2.3 裂殖壶菌胞内DHA油脂提取 | 第17-18页 |
| 1.2.4 裂殖壶菌合成DHA的代谢机理 | 第18-19页 |
| 1.3 微生物群体感应系统 | 第19-21页 |
| 1.3.1 微生物群体感应系统概述 | 第19-20页 |
| 1.3.2 细菌群体感应系统 | 第20页 |
| 1.3.3 真菌群体感应系统 | 第20-21页 |
| 1.4 本文选题意义及研究内容 | 第21-23页 |
| 1.4.1 选题意义 | 第21-22页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第22-23页 |
| 第二章 Schizochytrium sp. DP-16发酵产DHA油脂的条件优化 | 第23-40页 |
| 2.1 材料与方法 | 第23-27页 |
| 2.1.1 材料 | 第23-25页 |
| 2.1.1.1 菌种 | 第23页 |
| 2.1.1.2 培养基 | 第23页 |
| 2.1.1.3 仪器与设备 | 第23-24页 |
| 2.1.1.4 试剂 | 第24页 |
| 2.1.1.5 试剂配制 | 第24-25页 |
| 2.1.2 摇瓶发酵产DHA | 第25-26页 |
| 2.1.2.1 种子液制备 | 第25页 |
| 2.1.2.2 摇瓶发酵 | 第25页 |
| 2.1.2.3 DHA油脂提取方法优化 | 第25页 |
| 2.1.2.4 发酵条件优化 | 第25-26页 |
| 2.1.3 分析方法 | 第26-27页 |
| 2.1.3.1 生物量测定 | 第26页 |
| 2.1.3.2 葡萄糖浓度测定 | 第26页 |
| 2.1.3.3 油脂的GC-MS分析 | 第26-27页 |
| 2.2 结果与讨论 | 第27-39页 |
| 2.2.1 葡萄糖标准曲线 | 第27-28页 |
| 2.2.2 DHA油脂提取方法优化 | 第28-29页 |
| 2.2.3 培养基优化 | 第29-34页 |
| 2.2.3.1 碳源种类的影响 | 第29-30页 |
| 2.2.3.2 碳源浓度的影响 | 第30-31页 |
| 2.2.3.3 氮源种类的影响 | 第31-32页 |
| 2.2.3.4 氮源添加量的影响 | 第32-33页 |
| 2.2.3.5 无机盐浓度的影响 | 第33-34页 |
| 2.2.4 培养条件的优化 | 第34-37页 |
| 2.2.4.1 接种量的影响 | 第34-35页 |
| 2.2.4.2 装液量的影响 | 第35-36页 |
| 2.2.4.3 培养时间的影响 | 第36-37页 |
| 2.2.5 脂肪酸分析 | 第37-39页 |
| 2.3 小结 | 第39-40页 |
| 第三章 Schizochytrium sp. DP-16发酵产DHA油脂的时间进程研究 | 第40-49页 |
| 3.1 材料与方法 | 第40-43页 |
| 3.1.1 材料 | 第40-41页 |
| 3.1.1.1 菌种 | 第40页 |
| 3.1.1.2 培养基 | 第40页 |
| 3.1.1.3 仪器与设备 | 第40-41页 |
| 3.1.1.4 试剂 | 第41页 |
| 3.1.1.5 试剂配制 | 第41页 |
| 3.1.2 摇瓶发酵产DHA | 第41-42页 |
| 3.1.2.1 种子液制备 | 第41-42页 |
| 3.1.2.2 摇瓶发酵 | 第42页 |
| 3.1.3 分析方法 | 第42-43页 |
| 3.1.3.1 生物量测定 | 第42页 |
| 3.1.3.2 细胞密度测定 | 第42页 |
| 3.1.3.3 油脂产量测定 | 第42页 |
| 3.1.3.4 气相色谱分析 | 第42-43页 |
| 3.1.3.5 苏丹黑染色法 | 第43页 |
| 3.2 结果与讨论 | 第43-48页 |
| 3.2.1 生物量和油脂产量变化曲线 | 第43-45页 |
| 3.2.2 油脂含量和细胞密度变化曲线 | 第45-46页 |
| 3.2.3 DHA比例变化曲线 | 第46页 |
| 3.2.4 苏丹黑B染色Schizochytrium sp. DP-16细胞 | 第46-48页 |
| 3.3 小结 | 第48-49页 |
| 第四章 Schizochytrium sp. DP-16群体感应研究 | 第49-62页 |
| 4.1 材料与方法 | 第49-53页 |
| 4.1.1 材料 | 第49-51页 |
| 4.1.1.1 菌种 | 第49页 |
| 4.1.1.2 培养基 | 第49页 |
| 4.1.1.3 仪器与设备 | 第49-50页 |
| 4.1.1.4 试剂 | 第50-51页 |
| 4.1.2 群体感应初步研究 | 第51页 |
| 4.1.2.1 种子液制备 | 第51页 |
| 4.1.2.2 群体感应信号分子初步研究 | 第51页 |
| 4.1.2.3 萃取物的影响 | 第51页 |
| 4.1.2.4 DMSO的影响 | 第51页 |
| 4.1.2.5 四种已知真菌群体感应分子的影响 | 第51页 |
| 4.1.3 分析方法 | 第51-53页 |
| 4.1.3.1 生物量测定 | 第51-52页 |
| 4.1.3.2 细胞密度测定 | 第52页 |
| 4.1.3.3 油脂产量测定 | 第52页 |
| 4.1.3.4 气相色谱分析 | 第52页 |
| 4.1.3.5 细胞上清液HPLC分析 | 第52-53页 |
| 4.2 结果与讨论 | 第53-61页 |
| 4.2.1 群体感应信号分子初步研究 | 第53-55页 |
| 4.2.2 萃取物的影响 | 第55-57页 |
| 4.2.3 细胞上清液HPLC分析 | 第57-58页 |
| 4.2.4 DMSO的影响 | 第58-59页 |
| 4.2.5 四种已知真菌群体感应分子的影响 | 第59-61页 |
| 4.3 小结 | 第61-62页 |
| 第五章 结论与建议 | 第62-63页 |
| 5.1 主要结论 | 第62页 |
| 5.2 建议 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 硕士研究生期间论文发表情况 | 第68页 |
