纳豆加工工艺优化及纳豆中生物胺的检测和控制研究
摘要 | 第4-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
第一章 绪论 | 第10-20页 |
1.1 纳豆 | 第10-13页 |
1.1.1 纳豆概况 | 第10-11页 |
1.1.2 纳豆的研究生产现状 | 第11-13页 |
1.2 纳豆芽孢菌 | 第13-14页 |
1.2.1 纳豆芽孢菌概述 | 第13页 |
1.2.2 纳豆芽孢杆菌的研究现状 | 第13-14页 |
1.3 纳豆激酶 | 第14-18页 |
1.3.1 纳豆激酶概述 | 第14页 |
1.3.2 纳豆激酶理化性质 | 第14-15页 |
1.3.3 纳豆激酶的溶栓作用及其作用机理 | 第15-17页 |
1.3.4 纳豆激酶活性检测方法 | 第17-18页 |
1.3.5 纳豆激酶研究现状及应用前景 | 第18页 |
1.4 研究的目的、意义及主要研究类容 | 第18-20页 |
1.4.1 研究的目的及意义 | 第18-19页 |
1.4.2 主要研究内容 | 第19-20页 |
第二章 纳豆激酶活性检测方法的选择及改进 | 第20-29页 |
2.1 实验材料与主要试剂 | 第20页 |
2.2 实验主要仪器与设备 | 第20-21页 |
2.3 实验方法 | 第21-23页 |
2.3.1 相关试剂的配制 | 第21页 |
2.3.2 样品前处理 | 第21页 |
2.3.3 样品稀释倍数的确定 | 第21-22页 |
2.3.4 纤维蛋白平板法建立标准曲线 | 第22-23页 |
2.3.5 TAME法与纤维蛋白平板法关系的建立 | 第23页 |
2.4 结果与分析 | 第23-28页 |
2.4.1 纳豆激酶初提物的提取率 | 第23页 |
2.4.2 样品稀释倍数的确定 | 第23-24页 |
2.4.3 纤维蛋白平板法建立标准曲线 | 第24-25页 |
2.4.4 TAME法测纳豆激酶活性的线性关系 | 第25-26页 |
2.4.5 纤维蛋白平板法与TAME法关系的建立 | 第26-28页 |
2.5 小结 | 第28-29页 |
第三章 纳豆激酶发酵工艺的优化 | 第29-41页 |
3.1 实验材料与主要试剂 | 第29页 |
3.2 实验仪器与设备 | 第29-30页 |
3.3 实验方法 | 第30-32页 |
3.3.1 纳豆发酵工艺流程 | 第30页 |
3.3.2 大豆浸泡时间与初始含水量的关系 | 第30页 |
3.3.3 发酵时间对纳豆激酶活性的影响 | 第30页 |
3.3.4 发酵温度对纳豆激酶活性的影响 | 第30-31页 |
3.3.5 大豆浸泡时间对纳豆激酶活性的影响 | 第31页 |
3.3.6 初始pH对纳豆激酶活性的影响 | 第31页 |
3.3.7 纳豆发酵工艺优化实验设计 | 第31-32页 |
3.4 结果与分析 | 第32-40页 |
3.4.1 大豆浸泡时间与初始含水量的关系 | 第32-33页 |
3.4.2 发酵时间对纳豆激酶活性的影响结果 | 第33-34页 |
3.4.3 发酵温度对纳豆激酶活性的影响结果 | 第34-35页 |
3.4.4 大豆浸泡时间对纳豆激酶活性的影响结果 | 第35-36页 |
3.4.5 初始pH对纳豆激酶活性的影响结果 | 第36-37页 |
3.4.6 纳豆发酵工艺的优化实验结果 | 第37-40页 |
3.5 小结 | 第40-41页 |
第四章 纳豆中生物胺的检测及控制 | 第41-51页 |
4.1 实验材料与主要试剂 | 第41页 |
4.2 实验仪器与设备 | 第41-42页 |
4.3 实验方法 | 第42-45页 |
4.3.1 相关试剂的配制 | 第42-43页 |
4.3.2 生物胺标准曲线的建立 | 第43-44页 |
4.3.3 纳豆样品的生物胺检测 | 第44-45页 |
4.3.4 液相检测的精密度实验 | 第45页 |
4.3.5 氯化钠的添加对生物胺的抑制 | 第45页 |
4.3.6 氯化钠的添加都纳豆激酶活性的影响 | 第45页 |
4.4 结果与分析 | 第45-50页 |
4.4.1 生物胺检测的标准曲线 | 第45-47页 |
4.4.2 纳豆样品生物胺检测结果 | 第47-48页 |
4.4.3 液相检测的精密度实验结果 | 第48页 |
4.4.4 添加氯化钠对生物胺抑制作用结果 | 第48-49页 |
4.4.5 氯化钠的添加都纳豆激酶活性的影响结果 | 第49-50页 |
4.5 小结 | 第50-51页 |
第五 章总结 | 第51-53页 |
5.1 研究总结 | 第51页 |
5.2 创新之处 | 第51-52页 |
5.3 研究展望 | 第52-53页 |
参考文献 | 第53-57页 |
致谢 | 第57页 |