| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 0 前言 | 第14-31页 |
| 0.1 琼胶酶的研究现状及研究意义 | 第14-20页 |
| 0.1.1 琼胶酶的主要来源 | 第14-15页 |
| 0.1.2 菌株产酶能力的测定 | 第15-16页 |
| 0.1.3 天然琼胶酶的特征 | 第16-18页 |
| 0.1.4 琼胶酶的理论研究进展 | 第18页 |
| 0.1.5 琼胶酶理论研究的现实意义 | 第18-20页 |
| 0.2 红藻多糖及降解产物的研究进展 | 第20-24页 |
| 0.2.1 红藻多糖的结构与活性 | 第20-22页 |
| 0.2.2 红藻多糖的降解 | 第22-23页 |
| 0.2.3 红藻寡糖的构效关系研究 | 第23-24页 |
| 0.3 立题依据及研究内容 | 第24-26页 |
| 0.3.1 立题依据和意义 | 第24-25页 |
| 0.3.2 研究内容 | 第25-26页 |
| 参考文献 | 第26-31页 |
| 1 高产琼胶酶菌株的筛选、鉴定及发酵条件优化 | 第31-56页 |
| 1.1 引言 | 第31页 |
| 1.2 材料与仪器 | 第31-32页 |
| 1.2.1 试剂 | 第31-32页 |
| 1.2.2 主要仪器 | 第32页 |
| 1.2.3 培养基 | 第32页 |
| 1.3 方法 | 第32-37页 |
| 1.3.1 样品采集 | 第32-33页 |
| 1.3.2 平板初筛 | 第33页 |
| 1.3.3 复筛 | 第33页 |
| 1.3.4 葡萄糖标准曲线的绘制 | 第33-34页 |
| 1.3.5 琼胶酶活力的测定方法 | 第34页 |
| 1.3.6 菌株的形态学鉴定 | 第34页 |
| 1.3.7 分子生物学鉴定 | 第34-35页 |
| 1.3.8 传代数对菌株产酶稳定性的影响 | 第35页 |
| 1.3.9 单因素优化 | 第35-37页 |
| 1.3.10 响应面试验优化发酵条件 | 第37页 |
| 1.3.11 菌株QJ97的生长曲线和产酶曲线的测定 | 第37页 |
| 1.4 结果与分析 | 第37-53页 |
| 1.4.1 高产琼胶酶菌株的筛选 | 第37-38页 |
| 1.4.2 菌株QJ97的形态学特征 | 第38-39页 |
| 1.4.3 菌株QJ97 16S rDNA的测序结果和系统进化树 | 第39-40页 |
| 1.4.4 产酶稳定性结果 | 第40-41页 |
| 1.4.5 培养基组成优化 | 第41-46页 |
| 1.4.6 培养条件优化 | 第46-48页 |
| 1.4.7 响应面优化 | 第48-52页 |
| 1.4.8 菌株QJ97的生长曲线及产酶曲线 | 第52-53页 |
| 1.5 本章小结 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-56页 |
| 2 琼胶酶的分离纯化及酶学性质研究 | 第56-72页 |
| 2.1 引言 | 第56页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第56-57页 |
| 2.2.1 材料 | 第56-57页 |
| 2.2.2 仪器 | 第57页 |
| 2.3 方法 | 第57-60页 |
| 2.3.1 酶活力的测定 | 第57页 |
| 2.3.2 蛋白含量的测定 | 第57-58页 |
| 2.3.3 粗酶液的制备 | 第58页 |
| 2.3.4 琼胶酶的分离纯化 | 第58-59页 |
| 2.3.5 SDS-PAGE测定琼胶酶的分子量 | 第59页 |
| 2.3.6 酶学性质研究 | 第59-60页 |
| 2.4 结果与分析 | 第60-69页 |
| 2.4.1 丙酮沉淀结果 | 第60-61页 |
| 2.4.2 Q-Sepharose Fast Flow离子交换层析 | 第61-62页 |
| 2.4.3 Sephadex G-75凝胶过滤层析 | 第62页 |
| 2.4.4 Pseudoalteromonas sp.QJ97所产琼胶酶的纯化结果 | 第62-63页 |
| 2.4.5 SDS-PAGE电泳 | 第63-64页 |
| 2.4.6 酶学性质研究 | 第64-69页 |
| 2.5 本章小结 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-72页 |
| 3 红藻多糖的提取及其酶降解工艺研究 | 第72-84页 |
| 3.1 引言 | 第72页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第72-73页 |
| 3.2.1 材料 | 第72-73页 |
| 3.2.2 仪器 | 第73页 |
| 3.3 方法 | 第73-76页 |
| 3.3.1 还原糖的质量浓度 | 第73页 |
| 3.3.2 总糖的质量浓度 | 第73-74页 |
| 3.3.3 多糖得率的计算 | 第74页 |
| 3.3.4 还原糖得率的计算 | 第74页 |
| 3.3.5 红藻多糖的热水提取 | 第74页 |
| 3.3.6 红藻多糖的制备 | 第74-75页 |
| 3.3.7 红藻多糖的酶法降解 | 第75页 |
| 3.3.8 红藻多糖的酶解及乙醇分级沉淀 | 第75-76页 |
| 3.4 结果与分析 | 第76-82页 |
| 3.4.1 红藻多糖的热水提取 | 第76-77页 |
| 3.4.2 红藻多糖的酶法降解 | 第77-80页 |
| 3.4.3 乙醇沉淀工艺优化 | 第80-82页 |
| 3.5 本章小结 | 第82-83页 |
| 参考文献 | 第83-84页 |
| 4 红藻寡糖结构和活性的关系研究 | 第84-103页 |
| 4.1 引言 | 第84页 |
| 4.2 材料与仪器 | 第84-85页 |
| 4.2.1 材料 | 第84-85页 |
| 4.2.2 仪器 | 第85页 |
| 4.3 方法 | 第85-89页 |
| 4.3.1 红藻多糖的酶降解及产物的分级沉淀 | 第85-88页 |
| 4.3.2 酶解产物的结构分析 | 第88页 |
| 4.3.3 红藻多糖及其酶解产物羟自由基(·OH)清除能力测定 | 第88-89页 |
| 4.3.4 红藻多糖及其酶解产物抑菌活性的测定 | 第89页 |
| 4.4 结果与分析 | 第89-100页 |
| 4.4.1 红藻多糖的HPLC分析 | 第89-91页 |
| 4.4.2 酶解产物的ESI-MS分析 | 第91-96页 |
| 4.4.3 红藻多糖及其酶解产物的·OH清除能力与结构的关系 | 第96-98页 |
| 4.4.4 红藻多糖及其酶解产物的抑菌活性与结构的关系 | 第98-100页 |
| 4.5 本章小结 | 第100-101页 |
| 参考文献 | 第101-103页 |
| 结语与展望 | 第103-104页 |
| 论文创新点 | 第104-105页 |
| 致谢 | 第105-106页 |
| 个人简历 | 第106页 |
| 在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第106页 |
