| 摘要 | 第7-10页 |
| Abstract | 第10-13页 |
| 缩写表 | 第14-20页 |
| 第一章 绪论 | 第20-37页 |
| 1.1 猪脑及其活性多肽的研究现状 | 第20-22页 |
| 1.1.1 猪脑的概况 | 第20-21页 |
| 1.1.2 猪脑活性多肽的研究进展 | 第21-22页 |
| 1.2 生物活性肽的研究进展 | 第22-34页 |
| 1.2.1 生物活性肽的定义、来源和分类 | 第22-23页 |
| 1.2.2 生物活性肽的制备方法 | 第23-25页 |
| 1.2.3 生物活性肽的分离纯化 | 第25-28页 |
| 1.2.4 生物活性肽的结构鉴定 | 第28-30页 |
| 1.2.5 生物活性肽的生物活性 | 第30-34页 |
| 1.3 本课题研究的目的和意义 | 第34-35页 |
| 1.4 研究的思路和主要内容 | 第35-37页 |
| 第二章 逆流脉冲超声辅助酶解制备猪脑多肽及性质分析 | 第37-50页 |
| 2.1 仪器与材料 | 第37-38页 |
| 2.1.1 仪器 | 第37-38页 |
| 2.1.2 材料 | 第38页 |
| 2.2 实验方法 | 第38-42页 |
| 2.2.1 超声辅助酶解制备猪脑多肽 | 第38-39页 |
| 2.2.2 水解度测定 | 第39页 |
| 2.2.3 多肽浓度测定 | 第39页 |
| 2.2.4 水分、灰分和粗蛋白测定 | 第39-40页 |
| 2.2.5 相对分子量分布的测定 | 第40页 |
| 2.2.6 RP-HPLC法测定多肽疏水性 | 第40页 |
| 2.2.7 氨基酸组成测定 | 第40-41页 |
| 2.2.8 溶解度测定 | 第41页 |
| 2.2.9 乳化性 | 第41页 |
| 2.2.11 起泡性和泡沫稳定性测定 | 第41-42页 |
| 2.2.12 统计分析 | 第42页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第42-49页 |
| 2.3.1 不同处理猪脑蛋白制备多肽的影响 | 第42-43页 |
| 2.3.2 猪脑多肽的组成成分 | 第43-44页 |
| 2.3.3 猪脑多肽的相对分子量分布 | 第44-45页 |
| 2.3.4 猪脑多肽的疏水性 | 第45页 |
| 2.3.5 猪脑多肽的氨基酸组成 | 第45-47页 |
| 2.3.6 猪脑多肽的溶解度 | 第47页 |
| 2.3.7 猪脑多肽的乳化性 | 第47-48页 |
| 2.3.8 猪脑多肽的起泡性 | 第48-49页 |
| 2.4 本章小结 | 第49-50页 |
| 第三章 逆流脉冲超声辅助酶解猪脑蛋白的动力学和热力学研究 | 第50-63页 |
| 3.1 仪器与材料 | 第50-51页 |
| 3.1.1 仪器 | 第50-51页 |
| 3.1.2 材料 | 第51页 |
| 3.2 实验方法 | 第51-55页 |
| 3.2.1 逆流脉冲超声辅助酶解对动力学常数的影响 | 第51-52页 |
| 3.2.2 逆流脉冲超声辅助酶解对动力学反应速率常数k的影响 | 第52页 |
| 3.2.3 逆流脉冲超声辅助酶解热力学参数的测定 | 第52-53页 |
| 3.2.4 逆流脉冲超声辅助酶解动力学模型 | 第53-55页 |
| 3.2.5 统计分析 | 第55页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第55-62页 |
| 3.3.1 逆流脉冲超声辅助酶解猪脑蛋白对动力学参数的影响 | 第55-56页 |
| 3.3.2 逆流脉冲超声辅助酶解猪脑蛋白对反应速率常数k的影响 | 第56-58页 |
| 3.3.3 逆流脉冲超声辅助酶解猪脑蛋白对反应热力学参数的影响 | 第58-60页 |
| 3.3.4 逆流脉冲超声辅助酶解猪脑蛋白的反应动力学模型的建立 | 第60-62页 |
| 3.4 本章小结 | 第62-63页 |
| 第四章 猪脑多肽的生物活性研究 | 第63-92页 |
| 4.1 仪器与材料 | 第63-65页 |
| 4.1.1 仪器 | 第63-64页 |
| 4.1.2 材料 | 第64-65页 |
| 4.2 实验方法 | 第65-71页 |
| 4.2.1 UPCHPs镇静催眠活性研究 | 第65-67页 |
| 4.2.2 UPCHPs改善铅致学习记忆障碍活性研究 | 第67-69页 |
| 4.2.3 UPCHPs体外抗氧化活性研究 | 第69-71页 |
| 4.2.4 统计分析 | 第71页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第71-91页 |
| 4.3.1 UPCHPs的镇静催眠活性 | 第71-79页 |
| 4.3.2 UPCHPs改善铅致小鼠学习记忆的作用 | 第79-87页 |
| 4.3.3 UPCHPs的体外抗氧化活性 | 第87-91页 |
| 4.4 本章小结 | 第91-92页 |
| 第五章 猪脑多肽的分离纯化和结构鉴定 | 第92-108页 |
| 5.1 仪器与材料 | 第92-93页 |
| 5.1.1 仪器 | 第92-93页 |
| 5.1.2 材料 | 第93页 |
| 5.2 实验方法 | 第93-97页 |
| 5.2.1 粗UPCHPs的制备 | 第93页 |
| 5.2.2 ABTS~+·清除率的测定 | 第93页 |
| 5.2.3 超滤分离 | 第93-94页 |
| 5.2.4 DEAE-52纤维素柱分离纯化实验 | 第94页 |
| 5.2.5 Tricine-SDS-PAGE电泳 | 第94-95页 |
| 5.2.6 氨基酸组成分析 | 第95-96页 |
| 5.2.7 反相高效液相法(RP-HLPC)鉴定多肽纯度 | 第96页 |
| 5.2.8 基质辅助激光电离解析串联飞行时间质谱仪(MALDI-TOF-TOF-MS)鉴定多肽的氨基酸序列 | 第96页 |
| 5.2.9 体外模拟胃肠消化道酶系对UPCPHs-F31清除ABTS~+·活性的影响 | 第96页 |
| 5.2.10 统计分析 | 第96-97页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第97-107页 |
| 5.3.1 超滤法分离 | 第97-98页 |
| 5.3.2 DEAE-52层析柱分离纯化 | 第98-99页 |
| 5.3.3 Tricine-SDS-PAGE电泳分析 | 第99-101页 |
| 5.3.4 氨基酸组分分析 | 第101-102页 |
| 5.3.5 RP-HLPC检测 | 第102-103页 |
| 5.3.6 UPCHPs-F31质谱鉴定和数据库搜索 | 第103页 |
| 5.3.7 串联质谱的鉴定 | 第103-104页 |
| 5.3.8 体外模拟胃肠消化产物清除ABTS~+·的能力 | 第104-105页 |
| 5.3.9 RP-HPLC-ESI-MS/MS鉴定消化液产物 | 第105-107页 |
| 5.4 本章小结 | 第107-108页 |
| 第六章 猪脑多肽纯化组分的抗氧化活性研究 | 第108-121页 |
| 6.1 仪器与材料 | 第108-109页 |
| 6.1.1 仪器 | 第108页 |
| 6.1.2 材料 | 第108-109页 |
| 6.2 实验方法 | 第109-112页 |
| 6.2.1 清除DPPH·能力的测定 | 第109页 |
| 6.2.2 清除·OH能力的测定 | 第109页 |
| 6.2.3 螯合Fe~(2+)能力的测定 | 第109页 |
| 6.2.4 还原力的测定 | 第109页 |
| 6.2.5 脂质过氧化测定 | 第109页 |
| 6.2.6 β-胡萝卜素漂白抑制活性的测定 | 第109-110页 |
| 6.2.7 抗蛋白质氧化损伤的测定 | 第110页 |
| 6.2.8 抗DNA氧化损伤的测定 | 第110-111页 |
| 6.2.9 抗活性氧诱导脑损伤的测定 | 第111页 |
| 6.2.10 统计分析 | 第111-112页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第112-120页 |
| 6.3.1 UPCHPs-F31清除DPPH·的能力 | 第112页 |
| 6.3.2 UPCHPs-F31清除羟自由基的能力 | 第112-113页 |
| 6.3.3 UPCHPs-F31螯合Fe~(2+)能力 | 第113页 |
| 6.3.4 UPCHPs-F31的还原能力 | 第113-114页 |
| 6.3.5 UPCHPs-F31对脂质过氧化的抑制作用 | 第114-115页 |
| 6.3.6 UPCHPs-F31抑制β-胡萝卜素漂白活性 | 第115页 |
| 6.3.7 UPCHPs-F31抑制蛋白质氧化损伤的作用 | 第115-116页 |
| 6.3.8 UPCHPs-F31抑制DNA氧化损伤的作用 | 第116页 |
| 6.3.9 UPCHPs-F31对Cu~(2+)/H_2O_2诱导的脑组织氧化损伤的保护作用 | 第116-120页 |
| 6.4 本章小结 | 第120-121页 |
| 第七章 结论与展望 | 第121-123页 |
| 7.1 主要结论 | 第121-122页 |
| 7.2 本论文的主要创新点 | 第122页 |
| 7.3 展望 | 第122-123页 |
| 参考文献 | 第123-143页 |
| 致谢 | 第143-144页 |
| 攻读博士学位期间科研成果情况 | 第144-145页 |
| 1. 以第一作者发表的文章 | 第144-145页 |
| 2. 发明专利 | 第145页 |
| 3. 参与或主持课题 | 第145页 |
