| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 缩略词 | 第9-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-33页 |
| 1.1 鸭儿芹概述 | 第14-15页 |
| 1.2 鸭儿芹植物化学成分 | 第15-17页 |
| 1.2.1 挥发油 | 第15-16页 |
| 1.2.2 黄酮类化合物 | 第16页 |
| 1.2.3 三萜类化合物 | 第16页 |
| 1.2.4 有机酸及酚类化合物 | 第16-17页 |
| 1.2.5 其它成分 | 第17页 |
| 1.3 鸭儿芹生理药理作用 | 第17-18页 |
| 1.3.1 抗氧化作用 | 第17页 |
| 1.3.2 抗菌作用 | 第17页 |
| 1.3.3 抗肿瘤作用 | 第17页 |
| 1.3.4 护肝作用 | 第17页 |
| 1.3.5 其它作用 | 第17-18页 |
| 1.4 黄酮类化合物的分类及理化性质 | 第18-21页 |
| 1.4.1 黄酮类化合物的分类 | 第18-20页 |
| 1.4.2 黄酮类化合物的理化性质 | 第20-21页 |
| 1.5 黄酮类化合物的提取 | 第21-24页 |
| 1.5.1 溶剂萃取法 | 第21页 |
| 1.5.2 酶法辅助提取 | 第21页 |
| 1.5.3 超声波辅助提取 | 第21-22页 |
| 1.5.4 微波辅助提取 | 第22页 |
| 1.5.5 超临界CO_2萃取 | 第22-23页 |
| 1.5.6 高速逆流色谱 | 第23页 |
| 1.5.7 其它方法 | 第23-24页 |
| 1.6 黄酮类化合物的分离纯化 | 第24-25页 |
| 1.6.1 大孔树脂分离纯化 | 第24页 |
| 1.6.2 聚酰胺纯化 | 第24页 |
| 1.6.3 葡聚糖凝胶柱层析法 | 第24-25页 |
| 1.6.4 膜分离技术 | 第25页 |
| 1.6.5 其它纯化技术 | 第25页 |
| 1.7 黄酮类化合物的生物活性 | 第25-28页 |
| 1.7.1 抗氧化清除自由基活性 | 第26页 |
| 1.7.2 抑菌抗病毒作用 | 第26-27页 |
| 1.7.3 抗炎作用 | 第27页 |
| 1.7.4 抗肿瘤作用 | 第27-28页 |
| 1.7.5 降血脂降血糖作用 | 第28页 |
| 1.7.6 其它作用 | 第28页 |
| 1.8 黄酮类化合物的应用 | 第28-30页 |
| 1.8.1 天然抗氧化剂 | 第28-29页 |
| 1.8.2 保健食品 | 第29页 |
| 1.8.3 食用色素 | 第29页 |
| 1.8.4 天然风味增强剂 | 第29页 |
| 1.8.5 医药和化妆品 | 第29-30页 |
| 1.9 研究的目的、意义及研究内容 | 第30-33页 |
| 1.9.1 研究的目的和意义 | 第30页 |
| 1.9.2 研究的主要内容 | 第30-32页 |
| 1.9.3 技术路线 | 第32-33页 |
| 第二章 鸭儿芹黄酮类化合物提取分离工艺优化研究 | 第33-68页 |
| 2.1 材料与方法 | 第34-39页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第34-35页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第35页 |
| 2.1.3 仪器与设备 | 第35-36页 |
| 2.1.4 实验方法 | 第36-39页 |
| 2.2 结果 | 第39-64页 |
| 2.2.1 响应面法优化微波辅助提取鸭儿芹黄酮 | 第39-45页 |
| 2.2.2 响应面法优化超声波辅助提取鸭儿芹黄酮 | 第45-50页 |
| 2.2.3 正交法优化酶辅助提取鸭儿芹黄酮 | 第50-57页 |
| 2.2.4 不同提取方法的比较 | 第57-58页 |
| 2.2.5 大孔树脂分离工艺结果 | 第58-64页 |
| 2.3 讨论 | 第64-67页 |
| 2.4 小结 | 第67-68页 |
| 第三章 鸭儿芹黄酮类化合物的鉴定及含量检测 | 第68-85页 |
| 3.1 材料与方法 | 第68-73页 |
| 3.1.1 实验试剂 | 第68-69页 |
| 3.1.2 仪器与设备 | 第69页 |
| 3.1.3 实验方法 | 第69-73页 |
| 3.2 结果 | 第73-83页 |
| 3.2.1 质谱分析 | 第73-74页 |
| 3.2.2 黄酮和酚酸类化合物的鉴定 | 第74-80页 |
| 3.2.3 方法线性范围、相关系数、检测限、定量限和精密度 | 第80-81页 |
| 3.2.4 不同提(萃)取物黄酮和酚酸类化合物含量的比较 | 第81-83页 |
| 3.3 讨论 | 第83-84页 |
| 3.4 小结 | 第84-85页 |
| 第四章 鸭儿芹黄酮类化合物抗氧化与抗菌活性研究 | 第85-102页 |
| 4.1 材料与方法 | 第85-90页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第85页 |
| 4.1.2 实验试剂 | 第85-86页 |
| 4.1.3 仪器与设备 | 第86-87页 |
| 4.1.4 实验方法 | 第87-90页 |
| 4.2 结果 | 第90-99页 |
| 4.2.1 不同提(萃)取物黄酮,多酚含量 | 第90-91页 |
| 4.2.2 鸭儿芹黄酮类化合物抗氧化活性 | 第91-94页 |
| 4.2.3 鸭儿芹黄酮类化合物抗菌活性 | 第94-99页 |
| 4.3 讨论 | 第99-101页 |
| 4.4 小结 | 第101-102页 |
| 第五章 鸭儿芹黄酮类化合物抗炎活性及机理研究 | 第102-134页 |
| 5.1 材料与方法 | 第102-112页 |
| 5.1.1 实验材料 | 第102页 |
| 5.1.2 实验试剂 | 第102-104页 |
| 5.1.3 仪器与设备 | 第104-105页 |
| 5.1.4 实验方法 | 第105-112页 |
| 5.2 结果 | 第112-131页 |
| 5.2.1 不同极性萃取物对RAW264.7细胞的毒性 | 第112-115页 |
| 5.2.2 不同极性萃取物对LPS诱导RAW264.7细胞释放NO的影响 | 第115-118页 |
| 5.2.3 不同极性萃取物对LPS诱导RAW264.7细胞炎症因子分泌的影响 | 第118-125页 |
| 5.2.4 RT-qPCR检测炎症相关基因mRNA表达 | 第125-129页 |
| 5.2.5 EAF对LPS诱导的RAW264.7蛋白表达水平的影响 | 第129-130页 |
| 5.2.6 报告基因检测转染后RAW264.7细胞NF-κB的活性 | 第130-131页 |
| 5.3 讨论 | 第131-133页 |
| 5.4 小结 | 第133-134页 |
| 第六章 结论与展望 | 第134-136页 |
| 6.1 结论: | 第134-135页 |
| 6.2 创新点 | 第135页 |
| 6.3 展望 | 第135-136页 |
| 参考文献 | 第136-156页 |
| 攻读学位期间的主要学术成果 | 第156-158页 |
| 致谢 | 第158页 |
