| 摘要 | 第5-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 英文缩略表 | 第13-14页 |
| 第一章 引言 | 第14-20页 |
| 1.1 小麦肽概述 | 第14-17页 |
| 1.1.1 小麦肽的酶法制备 | 第14-15页 |
| 1.1.2 小麦肽的生物活性 | 第15-16页 |
| 1.1.3 小麦肽的应用 | 第16-17页 |
| 1.2 小麦谷氨酰胺肽研究进展 | 第17-18页 |
| 1.2.1 小麦谷氨酰胺肽制备方法 | 第17页 |
| 1.2.2 小麦谷氨酰胺肽的肠道修复作用 | 第17-18页 |
| 1.3 立题意义和研究内容 | 第18-20页 |
| 1.3.1 立题意义 | 第18-19页 |
| 1.3.2 研究内容 | 第19-20页 |
| 第二章 小麦Gln肽的高底物浓度制备及理化性质分析 | 第20-31页 |
| 2.1 引言 | 第20页 |
| 2.2 材料与方法 | 第20-23页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第20-21页 |
| 2.2.2 仪器与设备 | 第21页 |
| 2.2.3 试验方法 | 第21-23页 |
| 2.2.4 数据处理 | 第23页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第23-30页 |
| 2.3.1 高底物浓度小麦蛋白水解用酶筛选 | 第23-24页 |
| 2.3.2 XS酶水解小麦蛋白工艺条件研究 | 第24-26页 |
| 2.3.3 复合酶水解小麦蛋白工艺条件研究 | 第26-28页 |
| 2.3.4 小麦蛋白酶解产物氨基酸组成分析 | 第28-29页 |
| 2.3.5 小麦肽体外消化前后分子量分布 | 第29-30页 |
| 2.4 本章主要结论 | 第30-31页 |
| 第三章 小麦Gln肽对肠道细胞抵御氧化应激损伤的影响 | 第31-40页 |
| 3.1 引言 | 第31页 |
| 3.2 材料与方法 | 第31-33页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第31页 |
| 3.2.2 仪器与设备 | 第31-32页 |
| 3.2.3 试验方法 | 第32-33页 |
| 3.2.4 数据处理 | 第33页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第33-39页 |
| 3.3.1 不同浓度H_2O_2处理下Caco-2 细胞形态学观察 | 第33-35页 |
| 3.3.2 不同浓度H_2O_2处理下的细胞存活率 | 第35页 |
| 3.3.3 小麦肽预处理下氧化应激损伤细胞的存活率变化 | 第35-36页 |
| 3.3.4 小麦肽预处理下氧化应激损伤细胞的抗氧化能力 | 第36-39页 |
| 3.4 本章主要结论 | 第39-40页 |
| 第四章 小麦Gln肽对肠道炎症的改善作用 | 第40-48页 |
| 4.1 引言 | 第40页 |
| 4.2 材料与方法 | 第40-42页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第40页 |
| 4.2.2 仪器与设备 | 第40-41页 |
| 4.2.3 试验方法 | 第41-42页 |
| 4.2.4 数据处理 | 第42页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第42-47页 |
| 4.3.1 小鼠体重变化和临床表现情况 | 第42-43页 |
| 4.3.2 小鼠结肠长度 | 第43-44页 |
| 4.3.3 小鼠结肠组织病理情况 | 第44-45页 |
| 4.3.4 小鼠结肠组织MPO水平 | 第45页 |
| 4.3.5 小鼠结肠组织抗氧化能力 | 第45-46页 |
| 4.3.6 小鼠结肠组织炎症细胞因子水平 | 第46-47页 |
| 4.4 本章主要结论 | 第47-48页 |
| 第五章 冲调型小麦肽固体饮料的研发 | 第48-57页 |
| 5.1 引言 | 第48页 |
| 5.2 材料与方法 | 第48-50页 |
| 5.2.1 材料 | 第48页 |
| 5.2.2 试验方法 | 第48-50页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第50-56页 |
| 5.3.1 小麦肽氨基酸组成的调整 | 第50页 |
| 5.3.2 小麦肽固体饮料配方的优化 | 第50-54页 |
| 5.3.3 小麦肽固体饮料综合评价及相关标准 | 第54-56页 |
| 5.4 本章主要结论 | 第56-57页 |
| 第六章 结论与展望 | 第57-59页 |
| 6.1 结论 | 第57-58页 |
| 6.2 展望 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 作者简历 | 第66页 |
