摘要 | 第5-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
1 前言 | 第11-19页 |
1.1 立题背景 | 第11页 |
1.2 乳清及乳清蛋白研究进展 | 第11-13页 |
1.2.1 乳清概述 | 第11-12页 |
1.2.2 乳清的加工利用 | 第12页 |
1.2.3 乳清蛋白来源及营养价值 | 第12-13页 |
1.2.4 乳清蛋白的应用 | 第13页 |
1.3 抗氧化肽研究进展 | 第13-16页 |
1.3.1 抗氧化肽概述 | 第13-14页 |
1.3.2 抗氧化肽的酶法制备 | 第14页 |
1.3.3 抗氧化肽的分离纯化与鉴定 | 第14-15页 |
1.3.4 抗氧化肽的作用机理 | 第15-16页 |
1.4 抗氧化肽的应用研究进展 | 第16-18页 |
1.4.1 抗氧化肽在食品中的应用 | 第16-17页 |
1.4.2 抗氧化肽在护肤品中的应用 | 第17-18页 |
1.5 研究目的及意义 | 第18页 |
1.6 研究技术路线和内容 | 第18-19页 |
1.6.1 技术路线 | 第18-19页 |
1.6.2 研究内容 | 第19页 |
2 材料与方法 | 第19-27页 |
2.1 实验原料与试剂 | 第19-20页 |
2.2 主要实验设备 | 第20页 |
2.3 方法 | 第20-27页 |
2.3.1 乳清蛋白抗氧化肽的制备 | 第20-22页 |
2.3.2 乳清蛋白抗氧化肽超滤组分体外抗氧化活性研究 | 第22页 |
2.3.3 P-Ⅳ组分稳定性研究 | 第22-23页 |
2.3.4 Sephadex G-25 凝胶层析 | 第23-24页 |
2.3.5 DEAE-52 离子交换层析 | 第24-25页 |
2.3.6 RP-HPLC分离 | 第25页 |
2.3.7 RP-HPLC-MS/MS鉴定 | 第25页 |
2.3.8 指标测定方法 | 第25-27页 |
2.3.9 数据统计分析方法 | 第27页 |
3 结果与分析 | 第27-54页 |
3.1 乳清蛋白抗氧化肽的制备研究 | 第27-35页 |
3.1.1 最佳蛋白酶的筛选 | 第27-28页 |
3.1.2 中性蛋白酶酶解乳清蛋白制备抗氧化肽的单因素实验 | 第28-32页 |
3.1.3 中性蛋白酶酶解乳清蛋白制备抗氧化肽的响应面优化 | 第32-35页 |
3.2 乳清蛋白抗氧化肽超滤组分体外抗氧化活性研究 | 第35-39页 |
3.2.1 ·OH自由基清除能力 | 第35-36页 |
3.2.2 ABTS自由基清除能力 | 第36-37页 |
3.2.3 DPPH自由基清除能力 | 第37页 |
3.2.4 超氧阴离子自由基清除能力 | 第37-38页 |
3.2.5 还原力 | 第38-39页 |
3.2.6 抗氧化活性最强组分筛选 | 第39页 |
3.3 P-Ⅳ组分稳定性研究 | 第39-42页 |
3.3.1 温度对P-Ⅳ组分稳定性的影响 | 第39-40页 |
3.3.2 pH值对P-Ⅳ组分稳定性的影响 | 第40页 |
3.3.3 紫外线照射对P-IV组分稳定性的影响 | 第40-41页 |
3.3.4 Na Cl对 P-Ⅳ组分稳定性的影响 | 第41-42页 |
3.3.5 糖类对P-Ⅳ组分稳定性的影响 | 第42页 |
3.4 SEPHADEX G-25 凝胶层析分离纯化 | 第42-47页 |
3.4.1 不同洗脱液对分离效果的影响 | 第42-43页 |
3.4.2 不同上样量对分离效果的影响 | 第43-44页 |
3.4.3 不同洗脱流速对分离效果的影响 | 第44-45页 |
3.4.4 最佳分离条件的确定 | 第45-47页 |
3.5 DEAE-52 离子交换柱分离纯化 | 第47-52页 |
3.5.1 不同洗脱液对分离效果的影响 | 第47-48页 |
3.5.2 不同上样量对分离效果的影响 | 第48-50页 |
3.5.3 不同洗脱流速对分离效果的影响 | 第50-51页 |
3.5.4 最佳分离条件的确定 | 第51-52页 |
3.6 RP-HPLC分离 | 第52-53页 |
3.7 RP-HPLC-MS/MS鉴定 | 第53-54页 |
4 讨论 | 第54-57页 |
4.1 关于乳清蛋白抗氧化肽的制备 | 第54-55页 |
4.2 关于不同分子量乳清蛋白抗氧化肽的活性 | 第55页 |
4.3 关于乳清蛋白抗氧化肽的稳定性 | 第55-56页 |
4.4 关于乳清蛋白抗氧化肽的分离纯化与鉴定 | 第56-57页 |
5 结论 | 第57-58页 |
6 展望 | 第58-59页 |
参考文献 | 第59-66页 |
致谢 | 第66-67页 |
附录 | 第67-68页 |
作者简历 | 第68页 |