摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
前言 | 第12-19页 |
1 化疗药物对肠道黏膜的损伤 | 第12-14页 |
2 肠道黏膜上皮细胞结构与功能 | 第14-16页 |
2.1 肠道黏膜上皮细胞 | 第14-16页 |
2.2 肠上皮细胞紧密连接 | 第16页 |
3 鱿鱼墨多糖生物活性研究进展 | 第16-17页 |
4 研究目的、研究内容及意义 | 第17-19页 |
第一章 实验材料制备及动物模型建立 | 第19-25页 |
1 引言 | 第19页 |
2 材料和试剂 | 第19-20页 |
2.1 实验材料 | 第19页 |
2.2 实验试剂 | 第19页 |
2.3 实验仪器 | 第19-20页 |
3 实验方法 | 第20-21页 |
3.1 鱿鱼墨粗多糖的提取 | 第20页 |
3.2 总糖含量的测定—苯酚-硫酸法 | 第20-21页 |
3.3 蛋白质含量的测定—Folin-酚法 | 第21页 |
3.4 环磷酰胺剂量的确定 | 第21页 |
3.5 鱿鱼墨多糖剂量的确定 | 第21页 |
4 结果与讨论 | 第21-23页 |
4.1 鱿鱼墨粗多糖的提取及化学组分测定 | 第21-22页 |
4.2 环磷酰胺造模剂量的确定 | 第22-23页 |
4.3 鱿鱼墨多糖灌胃剂量的确定 | 第23页 |
5 本章小结 | 第23-25页 |
第二章 鱿鱼墨多糖对小鼠肠道黏膜上皮细胞保护作用研究 | 第25-41页 |
1 引言 | 第25页 |
2 材料和试剂 | 第25-27页 |
2.1 实验材料 | 第25页 |
2.2 实验动物 | 第25页 |
2.3 实验试剂 | 第25-27页 |
2.4 实验仪器 | 第27页 |
3 实验方法 | 第27-31页 |
3.1 动物实验 | 第27页 |
3.2 病理学组织切片及 HE 染色 | 第27-28页 |
3.3 小肠绒毛长度和隐窝深度的测量 | 第28页 |
3.4 小肠组织匀浆液超氧化物歧化酶 SOD 及丙二醛 MDA 含量的测定 | 第28页 |
3.5 Real time-RT-PCR 方法检测基因表达量 | 第28-29页 |
3.6 Western blot 方法检测蛋白表达量 | 第29-31页 |
3.7 透射电镜观察细胞超微结构 | 第31页 |
3.8 数据统计处理 | 第31页 |
4 结果与讨论 | 第31-39页 |
4.1 小鼠腹泻情况 | 第31页 |
4.2 小鼠体重变化 | 第31-32页 |
4.3 小肠组织形态学改变 | 第32-33页 |
4.4 鱿鱼墨多糖对小肠绒毛长度、隐窝深度及 V/C 值的影响 | 第33-34页 |
4.5 鱿鱼墨多糖对小肠细胞紧密连接蛋白的影响作用 | 第34-38页 |
4.6 小肠微绒毛超微结构的改变 | 第38页 |
4.7 鱿鱼墨多糖对小肠组织匀浆上清中 SOD 与 MDA 含量的影响 | 第38-39页 |
5 本章小结 | 第39-41页 |
第三章 鱿鱼墨多糖对小肠潘氏细胞和杯状细胞的保护作用及机理 | 第41-64页 |
1 引言 | 第41页 |
2 材料和试剂 | 第41-42页 |
2.1 实验材料 | 第41页 |
2.2 实验动物 | 第41页 |
2.3 实验试剂 | 第41-42页 |
2.4 实验仪器 | 第42页 |
3 实验方法 | 第42-44页 |
3.1 动物实验 | 第42页 |
3.2 小肠绒毛和隐窝的分离和富集 | 第42-43页 |
3.3 Real time-RT-PCR 方法检测基因表达量 | 第43页 |
3.4 Western blot 方法检测蛋白表达量 | 第43页 |
3.5 病理学组织切片及 AB-PAS 染色 | 第43-44页 |
3.6 透射电镜观察细胞超微结构 | 第44页 |
3.7 数据统计处理 | 第44页 |
4 结果与讨论 | 第44-61页 |
4.1 小肠绒毛和隐窝的分离和富集 | 第44-46页 |
4.2 鱿鱼墨多糖对小肠潘氏细胞的保护作用及机理 | 第46-56页 |
4.3 鱿鱼墨多糖对小肠杯状细胞的保护作用及机理 | 第56-61页 |
5 本章小结 | 第61-64页 |
结论 | 第64-66页 |
1 总结 | 第64-65页 |
2 本论文创新点 | 第65-66页 |
参考文献 | 第66-72页 |
致谢 | 第72-73页 |
个人简历 | 第73页 |
发表的学术论文 | 第73-74页 |