| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 符号说明 | 第8-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-20页 |
| 1.1 海参概述 | 第12-13页 |
| 1.1.1 海参简介 | 第12页 |
| 1.1.2 海参生活环境及习性 | 第12-13页 |
| 1.1.3 海参的营养价值 | 第13页 |
| 1.2 海参生物活性成分与功效 | 第13-15页 |
| 1.2.1 抗癌作用 | 第13页 |
| 1.2.2 抗血栓作用 | 第13-14页 |
| 1.2.3 抗糖尿病作用 | 第14页 |
| 1.2.4 增强免疫作用和抗炎作用 | 第14页 |
| 1.2.5 抗氧化作用 | 第14-15页 |
| 1.2.6 其他作用 | 第15页 |
| 1.3 即食海参与其失稳现象 | 第15-17页 |
| 1.4 即食海参的加工与保藏 | 第17-19页 |
| 1.4.1 即食海参的加工技术 | 第17-18页 |
| 1.4.2 即食海参的保藏工艺 | 第18-19页 |
| 1.5 本课题的立题依据与主要研究内容 | 第19-20页 |
| 第二章 鲜活海参体壁多糖水解酶的酶学性质研究与初步分离纯化 | 第20-48页 |
| 2.1 实验仪器与试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.1 主要实验仪器 | 第20页 |
| 2.1.2 主要原料和试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.3 主要试剂配制 | 第21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-27页 |
| 2.2.1 多糖水解酶活力测定方法的建立 | 第21-23页 |
| 2.2.1.2 底物溶液的配制方法 | 第23页 |
| 2.2.1.3 MBTH-PCR板法测定还原糖浓度及还原糖浓度标准曲线的绘制 | 第23页 |
| 2.2.1.4 MBTH-PCR板法测定系列多糖水解酶活力 | 第23页 |
| 2.2.2 蛋白浓度的测定方法及蛋白浓度标准曲线的绘制 | 第23-24页 |
| 2.2.3 海参体壁粗酶液的制备及蛋白浓度的测定 | 第24页 |
| 2.2.4 浸提pH对海参体壁粗酶液中系列多糖水解酶浸提量的影响 | 第24页 |
| 2.2.5 高通量筛选海参体壁浸提酶液中系列多糖水解酶及其 pH 对酶活力的影响 | 第24-25页 |
| 2.2.6 高通量筛选海参体壁浸提酶液中热稳定性多糖水解酶 | 第25页 |
| 2.2.7 海参体壁浸提酶液Q-Fast Flow阴离子交换层析梯度洗脱 | 第25页 |
| 2.2.8 凝胶层析 | 第25-26页 |
| 2.2.9 SDS-PAGE电泳 | 第26-27页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第27-47页 |
| 2.3.1 多糖水解酶活力测定方法的建立 | 第27-30页 |
| 2.3.2 蛋白浓度的测定及蛋白浓度标准曲线的绘制 | 第30页 |
| 2.3.3 浸提pH对海参体壁粗酶液中多糖水解酶提取量的影响 | 第30-31页 |
| 2.3.4 浸提pH对海参体壁粗酶液中系列多糖水解酶提取量的影响 | 第31-33页 |
| 2.3.5 浸提pH粗酶液的蛋白分子量分布 | 第33-34页 |
| 2.3.6 高通量分析法筛选海参体壁浸提酶液中系列多糖水解酶及其pH对酶活力的影响 | 第34-35页 |
| 2.3.7 海参体壁浸提酶液中系列多糖水解酶热稳定性研究 | 第35-37页 |
| 2.3.8 海参体壁浸提酶液Q-Fast-Flow阴离子交换层析梯度洗脱 | 第37-39页 |
| 2.3.9 SDS-PAGE电泳验证蛋白酶活力 | 第39-40页 |
| 2.3.10 离子交换层析分离组分的凝胶层析与SDS-PAGE分析 | 第40-47页 |
| 2.4 小结 | 第47-48页 |
| 第三章 蒸煮海参体壁多糖水解酶的酶学性质研究与初步分离纯化 | 第48-66页 |
| 3.1 实验仪器与试剂 | 第48-49页 |
| 3.1.1 主要实验仪器 | 第48页 |
| 3.1.2 主要试剂与材料 | 第48页 |
| 3.1.3 主要试剂配制 | 第48-49页 |
| 3.2 实验方法 | 第49-52页 |
| 3.2.1 沸水热处理对蒸煮海参体壁品温的影响 | 第49页 |
| 3.2.2 蒸煮海参粗酶液的制备 | 第49-50页 |
| 3.2.3 MBTH-离心管法测定系列多糖水解酶活力 | 第50页 |
| 3.2.4 浸提缓冲液pH对海参体壁粗酶液中系列多糖水解酶活力的影响 | 第50页 |
| 3.2.5 pH对海参体壁粗酶液中系列多糖水解酶活力的影响 | 第50页 |
| 3.2.6 温度对海参体壁粗酶液中系列多糖水解酶活力的影响 | 第50页 |
| 3.2.7 海参体壁浸提(pH7.0)酶液Q-Fast Flow阴离子交换层析洗脱 | 第50-51页 |
| 3.2.8 QFF未吸附酶液和浓缩后各级分洗脱酶液系列多糖水解酶活力的测定 | 第51页 |
| 3.2.9 QFF未吸附酶液凝胶层析及蛋白酶、多糖水解酶活力测定 | 第51-52页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第52-64页 |
| 3.3.1 沸水热处理对蒸煮海参体壁品温的影响 | 第52页 |
| 3.3.2 浸提pH对蒸煮海参体壁蛋白提取量的影响 | 第52-53页 |
| 3.3.3 浸提缓冲液pH对海参体壁粗酶液中系列多糖水解酶活力的影响 | 第53-56页 |
| 3.3.4 浸提pH粗酶液的电泳测定 | 第56页 |
| 3.3.5 pH对海参体壁粗酶液中系列多糖水解酶活力的影响 | 第56-58页 |
| 3.3.6 温度对海参体壁中多糖水解酶活力的影响 | 第58-62页 |
| 3.3.7 海参体壁浸提（pH7.0）酶液Q-Fast Flow阴离子交换层析线性洗脱 | 第62页 |
| 3.3.8 海参体壁浸提（pH7.0）酶液 Q-Fast Flow 阴离子交换层析梯度洗脱 | 第62-63页 |
| 3.3.9 QFF未吸附酶液和浓缩后各级分洗脱酶液系列多糖水解酶活力的测定 | 第63页 |
| 3.3.10 QFF未吸附酶液凝胶层析及蛋白酶、多糖水解酶活力测定 | 第63-64页 |
| 3.4 小结 | 第64-66页 |
| 第四章 蒸煮海参体壁稳定化研究 | 第66-70页 |
| 4.1 实验仪器与试剂 | 第66页 |
| 4.1.1 主要实验仪器 | 第66页 |
| 4.1.2 实验材料与试剂 | 第66页 |
| 4.1.3 主要试剂配制 | 第66页 |
| 4.2 实验方法 | 第66-67页 |
| 4.2.1 金属离子溶液对粗酶液中多糖水解酶活力的影响 | 第66-67页 |
| 4.2.2 壳聚糖对粗酶液中多糖水解酶活力的影响 | 第67页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第67-69页 |
| 4.3.1 金属离子对粗酶液中多糖水解酶活力的影响 | 第67-69页 |
| 4.3.2 壳聚糖对粗酶液中多糖水解酶活力的影响 | 第69页 |
| 4.4 小结 | 第69-70页 |
| 第五章 结论与展望 | 第70-73页 |
| 5.1 结论 | 第70-71页 |
| 5.2 展望 | 第71-72页 |
| 5.3 创新点 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文和申请专利 | 第79-80页 |
