| 摘要 | 第5-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-25页 |
| 1.1 多糖免疫活性简介 | 第10-15页 |
| 1.1.1 多糖免疫活性概述 | 第10页 |
| 1.1.2 外周血单个核细胞（PBMC）在多糖免疫研究中的应用 | 第10-11页 |
| 1.1.3 自然杀伤细胞（NK）在多糖免疫研究中的应用 | 第11-15页 |
| 1.2 人体肠道菌群概述 | 第15-19页 |
| 1.2.1 人体肠道菌群的组成及其作用 | 第15-17页 |
| 1.2.2 植物多糖对肠道菌群的调节作用 | 第17页 |
| 1.2.3 菌群人源化动物模型研究肠道菌群 | 第17-18页 |
| 1.2.4 PCR-DGGE技术在肠道菌群的应用 | 第18-19页 |
| 1.3 沙蒿及沙蒿胶多糖概述 | 第19-22页 |
| 1.3.1 沙蒿 | 第19-20页 |
| 1.3.2 沙蒿胶多糖 | 第20-22页 |
| 1.4 研究进展 | 第22页 |
| 1.5 本课题研究的内容 | 第22-25页 |
| 1.5.1 沙蒿胶多糖提取、分离 | 第22-23页 |
| 1.5.2 沙蒿胶多糖对人外周血单核细胞（PBMC）的增值作用 | 第23页 |
| 1.5.3 沙蒿胶多糖对NK增值率以及杀伤率的影响 | 第23页 |
| 1.5.4 沙蒿胶多糖对HFA人源化小鼠生理及肠道微生物结构的影响 | 第23-25页 |
| 第二章 沙蒿胶多糖分离纯化及免疫活性比较 | 第25-40页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第25-26页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第25-26页 |
| 2.1.2 主要试剂和仪器 | 第26页 |
| 2.1.2.1 主要试剂 | 第26页 |
| 2.1.2.2 仪器与设备 | 第26页 |
| 2.1.3 主要溶液配制 | 第26页 |
| 2.2 试验方法 | 第26-30页 |
| 2.2.1 沙蒿胶多糖提取和分离 | 第26-27页 |
| 2.2.2 60P、60S组分的分离 | 第27-28页 |
| 2.2.3 PBMC的分离以及3种多糖对PBMC的增值活性的影响 | 第28-29页 |
| 2.2.4 NK体外扩增以及增值活性、杀伤活性测定 | 第29页 |
| 2.2.5 数据处理 | 第29-30页 |
| 2.3 结果与分析 | 第30-38页 |
| 2.3.1 沙蒿胶多糖对人PBMC活性的影响 | 第30-32页 |
| 2.3.2 沙蒿胶多糖对人NK细胞增殖活性的影响 | 第32-35页 |
| 2.3.3 沙蒿胶多糖对人NK细胞杀伤活性的影响 | 第35-36页 |
| 2.3.4 不同多糖对免疫细胞活性的影响 | 第36-38页 |
| 2.4 讨论 | 第38-39页 |
| 2.5 小结 | 第39-40页 |
| 第三章 沙蒿胶多糖与燕麦 β-葡聚糖对菌群人源化小鼠生理及肠道微生物调节比较 | 第40-51页 |
| 3.1 材料与方法 | 第40-42页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第40-41页 |
| 3.1.2 试验主要仪器与设备 | 第41页 |
| 3.1.3 主要溶液配制 | 第41-42页 |
| 3.2 方法 | 第42-43页 |
| 3.2.1 实验动物分组与处理 | 第42页 |
| 3.2.2 粪便细菌总DNA的提取 | 第42页 |
| 3.2.3 PCR扩增 | 第42-43页 |
| 3.2.4 DGGE电泳、染色以及凝胶回收、测序 | 第43页 |
| 3.2.5 对DGGE图谱进行数字化处理和多样性分析 | 第43页 |
| 3.2.6 统计学分析 | 第43页 |
| 3.3 结果与分析 | 第43-47页 |
| 3.3.1 多糖对HFA小鼠血清生化指标的影响 | 第43-44页 |
| 3.3.2 切片结果 | 第44-45页 |
| 3.3.2.1 肝脏HE染色结果 | 第44-45页 |
| 3.3.2.2 脂肪HE染色结果 | 第45页 |
| 3.3.3 多糖对HFA小鼠肠道菌群的影响 | 第45-47页 |
| 3.4 讨论 | 第47-49页 |
| 3.5 小结 | 第49-51页 |
| 第四章 结论与展望 | 第51-54页 |
| 4.1 沙蒿胶多糖对外周血淋巴细胞以及自然杀伤细胞活性的影响 | 第51页 |
| 4.2 沙蒿胶多糖对菌群人源化小鼠生理及肠道微生物的调节作用 | 第51-53页 |
| 4.3 展望 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 作者简介 | 第60页 |
