| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第1章 文献综述 | 第11-23页 |
| 1.1 盐酸克伦特罗概述 | 第11-16页 |
| 1.1.1 CLB的残留现状 | 第11-12页 |
| 1.1.2 CLB残留检测方法研究进展 | 第12-16页 |
| 1.2 磁性微粒在食品分析检测中的应用 | 第16-17页 |
| 1.3 便携式血糖仪的发展和应用现状 | 第17-20页 |
| 1.4 研究意义和内容 | 第20-23页 |
| 第2章 免疫磁珠探针的制备 | 第23-33页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第23-24页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第23-24页 |
| 2.1.2 主要仪器及设备 | 第24页 |
| 2.2 试验方法 | 第24-26页 |
| 2.2.1 免疫磁珠的制备 | 第24-25页 |
| 2.2.2 免疫磁珠制备条件优化 | 第25-26页 |
| 2.2.3 偶联效率的计算 | 第26页 |
| 2.2.4 数据处理 | 第26页 |
| 2.3 结果与分析 | 第26-32页 |
| 2.3.1 最佳CLB-BSA添加量的确定 | 第26-27页 |
| 2.3.2 最佳反应温度的确定 | 第27-28页 |
| 2.3.3 最佳反应时间的确定 | 第28页 |
| 2.3.4 磁珠偶联条件优化 | 第28-32页 |
| 2.4 本章小结 | 第32-33页 |
| 第3章 IgG-AuNPs-Invertase复合物的制备及表征 | 第33-41页 |
| 3.1 试验材料与仪器 | 第33-34页 |
| 3.2 试验方法 | 第34-37页 |
| 3.2.1 胶体金溶液的制备及表征 | 第34-35页 |
| 3.2.2 胶体金生物探针（IgG-Au NPs-Invertase）制备及表征 | 第35页 |
| 3.2.3 胶体金生物探针（IgG-Au NPs-Invertase）制备条件优化 | 第35-37页 |
| 3.3 结果与分析 | 第37-40页 |
| 3.3.1 胶体金和胶体金复合物的表征 | 第37-38页 |
| 3.3.2 pH对胶体金标记的影响 | 第38-39页 |
| 3.3.3 兔抗羊Ig G浓度对胶体金标记的影响 | 第39页 |
| 3.3.4 转化酶浓度对胶体金标记的影响 | 第39-40页 |
| 3.4 本章小结 | 第40-41页 |
| 第4章 基于便携式血糖仪检测CLB方法的构建 | 第41-57页 |
| 4.1 试验材料与仪器 | 第41-42页 |
| 4.1.1 主要材料与试剂 | 第41-42页 |
| 4.1.2 主要仪器设备 | 第42页 |
| 4.2 试验原理 | 第42-43页 |
| 4.3 试验方法 | 第43-46页 |
| 4.3.1 便携式血糖仪定量检测CLB方法设计思路 | 第43-44页 |
| 4.3.2 便携式血糖仪定量检测CLB的具体操作步骤 | 第44页 |
| 4.3.3 样品的前处理 | 第44页 |
| 4.3.4 便携式血糖仪定量检测CLB方法构建中条件优化 | 第44-45页 |
| 4.3.5 标准曲线绘制 | 第45页 |
| 4.3.6 基于便携式血糖仪检测CLB方法的构建 | 第45页 |
| 4.3.7 方法验证 | 第45-46页 |
| 4.3.8 构建方法和HPLC检测结果相关性分析 | 第46页 |
| 4.4 结果与分析 | 第46-54页 |
| 4.4.1 免疫磁珠用量及最佳抗体浓度的选择 | 第46-48页 |
| 4.4.2 IgG-Au NPs-Invertase稀释度对信号值的影响 | 第48-49页 |
| 4.4.3 转化酶参与水解反应条件优化 | 第49-50页 |
| 4.4.4 标准曲线绘制及检测限 | 第50-51页 |
| 4.4.5 基于便携式血糖仪检测CLB | 第51页 |
| 4.4.6 方法准确度判断 | 第51-52页 |
| 4.4.7 批内、批间变异系数 | 第52页 |
| 4.4.8 检测方法的特异性验证结果 | 第52-53页 |
| 4.4.9 构建方法和HPLC检测结果对比 | 第53-54页 |
| 4.5 讨论 | 第54-55页 |
| 4.6 本章小结 | 第55-57页 |
| 第5章 结论 | 第57-59页 |
| 参考文献 | 第59-65页 |
| 缩略语词汇表 | 第65-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第68页 |
