| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 引言 | 第14-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-24页 |
| 1.1 概述 | 第15页 |
| 1.2 香瓜茄的研究现状 | 第15-19页 |
| 1.2.1 资源分布 | 第15-16页 |
| 1.2.2 植物学特征 | 第16页 |
| 1.2.3 营养成分 | 第16-19页 |
| 1.2.3.1 氨基酸 | 第16-17页 |
| 1.2.3.2 维生素 | 第17-18页 |
| 1.2.3.3 糖类 | 第18页 |
| 1.2.3.4 微量元素 | 第18-19页 |
| 1.2.3.5 其他 | 第19页 |
| 1.3 香瓜茄的活性成分的提取 | 第19-21页 |
| 1.3.1 黄酮类化合物 | 第19-20页 |
| 1.3.2 可溶性蛋白 | 第20页 |
| 1.3.3 多糖类化合物 | 第20-21页 |
| 1.4 香瓜茄提取物的生理活性 | 第21-23页 |
| 1.4.1 预防糖尿病 | 第21-22页 |
| 1.4.2 抗炎 | 第22页 |
| 1.4.3 抗高血压 | 第22页 |
| 1.4.4 抗氧化 | 第22-23页 |
| 1.4.5 抗肿瘤 | 第23页 |
| 1.4.5.1 诱导细胞凋亡 | 第23页 |
| 1.4.5.2 增强免疫机制 | 第23页 |
| 1.5 结论与展望 | 第23-24页 |
| 第二章 香瓜茄提取物响应面工艺优化 | 第24-37页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第24页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第24页 |
| 2.1.2 仪器与设备 | 第24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-26页 |
| 2.2.1 原材料的预处理 | 第24页 |
| 2.2.2 香瓜茄醇提工艺流程 | 第24-25页 |
| 2.2.3 提取率的计算 | 第25页 |
| 2.2.4 单因素试验 | 第25页 |
| 2.2.4.1 不同料液比对香瓜茄醇提物浸膏提取率的影响 | 第25页 |
| 2.2.4.2 不同提取温度对香瓜茄醇提物浸膏提取率的影响 | 第25页 |
| 2.2.4.3 不同乙醇浓度对香瓜茄醇提物浸膏提取率的影响 | 第25页 |
| 2.2.4.4 不同提取时间对香瓜茄醇提物浸膏提取率的影响 | 第25页 |
| 2.2.5 响应面分析 | 第25-26页 |
| 2.2.5.1 响应面分析实验设计 | 第26页 |
| 2.3 结果与分析 | 第26-35页 |
| 2.3.1 单因素实验结果 | 第26-29页 |
| 2.3.1.1 料液比对香瓜茄乙醇提取物提取率的影响 | 第26-27页 |
| 2.3.1.2 提取温度对香瓜茄乙醇提取物提取率的影响 | 第27-28页 |
| 2.3.1.3 乙醇浓度对香瓜茄乙醇提取物提取率的影响 | 第28页 |
| 2.3.1.4 提取时间对香瓜茄乙醇提取物提取率的影响 | 第28-29页 |
| 2.3.2 响应面试验结果与分析 | 第29-35页 |
| 2.3.2.1 模型的建立与方差分析 | 第29-31页 |
| 2.3.2.2 响应曲面与等高线分析 | 第31-35页 |
| 2.3.2.3 最佳工艺条件的确认和验证 | 第35页 |
| 2.4 小结 | 第35-37页 |
| 第三章 香瓜茄提取物抗氧化活性研究 | 第37-47页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第37-38页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第37-38页 |
| 3.1.2 仪器与设备 | 第38页 |
| 3.2 实验方法 | 第38-42页 |
| 3.2.0 香瓜茄各萃取部位的制备 | 第38-39页 |
| 3.2.1 DPPH自由基清除率的测定 | 第39-40页 |
| 3.2.1.1 DPPH自由基清除实验原理 | 第39-40页 |
| 3.2.1.2 DPPH自由基清除实验步骤 | 第40页 |
| 3.2.2 ABTS自由基的测定 | 第40-41页 |
| 3.2.2.1 ABTS自由基实验原理 | 第40-41页 |
| 3.2.2.1 ABTS自由基实验步骤 | 第41页 |
| 3.2.3 还原力实验 | 第41-42页 |
| 3.2.3.1 还原力实验原理 | 第41-42页 |
| 3.2.3.2 还原力实验步骤 | 第42页 |
| 3.3 实验结果与分析 | 第42-45页 |
| 3.3.1 DPPH自由基清除实验 | 第42-44页 |
| 3.3.2 ABTS自由基清除实验 | 第44页 |
| 3.3.3 还原力能力实验 | 第44-45页 |
| 3.4 小结 | 第45-47页 |
| 第四章 香瓜茄抑菌活性与抗癌活性研究 | 第47-58页 |
| 4.1 材料与设备 | 第47-49页 |
| 4.1.1 材料与试剂 | 第48页 |
| 4.1.2 受试菌种 | 第48页 |
| 4.1.3 受试细胞 | 第48页 |
| 4.1.4 仪器与设备 | 第48-49页 |
| 4.2 实验方法 | 第49-51页 |
| 4.2.1 香瓜茄抑菌活性研究 | 第49-50页 |
| 4.2.1.1 香瓜茄乙醇提取物与各萃取部位样品溶液的制备 | 第49页 |
| 4.2.1.2 不同菌种菌悬液的制备 | 第49页 |
| 4.2.1.3 无菌纸片的制备 | 第49页 |
| 4.2.1.4 平板制备 | 第49页 |
| 4.2.1.5 纸片扩散法 | 第49-50页 |
| 4.2.2 香瓜茄抗癌活性研究 | 第50-51页 |
| 4.2.2.1 细胞培养与传代 | 第50页 |
| 4.2.2.2 CCK-8增殖抑制实验 | 第50页 |
| 4.2.2.3 细胞形态学观察 | 第50-51页 |
| 4.3 实验结果与分析 | 第51-57页 |
| 4.3.1 香瓜茄的抑菌能力 | 第51页 |
| 4.3.2 香瓜茄的抗肿瘤能力 | 第51-57页 |
| 4.3.2.1 不同浓度的香瓜茄乙醇提取物与各萃取部位样品对SK-Hep-1细胞的增殖抑制能力比较 | 第51-52页 |
| 4.3.2.2 不同浓度的香瓜茄乙醇提取物与各萃取部位样品对SK-Hep-1细胞形态的影响 | 第52-56页 |
| 4.3.2.3 不同处理时间的香瓜茄乙醇提取物乙酸乙酯萃取部位样品对SK-Hep-1细胞形态的影响 | 第56-57页 |
| 4.4 小结 | 第57-58页 |
| 第五章 香瓜茄活性成分分析与分离鉴定 | 第58-68页 |
| 5.1 材料与设备 | 第58-59页 |
| 5.1.1 材料与试剂 | 第58页 |
| 5.1.2 仪器与设备 | 第58-59页 |
| 5.2 实验方法 | 第59-61页 |
| 5.2.1 GC-MS/MS测定香瓜茄中挥发性成分 | 第59页 |
| 5.2.1.1 制备供试品溶液 | 第59页 |
| 5.2.1.2 GC-MS/MS 操作方法 | 第59页 |
| 5.2.2 提取与乙酸乙酯萃取部位的制备 | 第59-60页 |
| 5.2.3 分离与纯化 | 第60-61页 |
| 5.2.4 结构鉴定 | 第61页 |
| 5.3 实验结果与分析 | 第61-67页 |
| 5.3.1 GC-MS/MS结果分析 | 第61-62页 |
| 5.3.2 分离化合物的结构鉴定 | 第62-67页 |
| 5.4 小结 | 第67-68页 |
| 第六章 总结与展望 | 第68-70页 |
| 6.1 总结 | 第68-69页 |
| 6.2 展望 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-74页 |
| 附录 | 第74-80页 |
| 攻读硕士学位期间发表学术论文情况 | 第80-81页 |
| 致谢 | 第81页 |
