| 致谢 | 第6-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-34页 |
| 1.1 引言 | 第16-17页 |
| 1.2 甾体药物概述 | 第17-19页 |
| 1.2.1 甾体化合物的分类和应用 | 第17-18页 |
| 1.2.2 甾体化合物的结构和性质 | 第18-19页 |
| 1.3 甾体的微生物转化 | 第19-21页 |
| 1.3.1 微生物转化甾体的特点 | 第19页 |
| 1.3.2 甾体的微生物催化反应类型 | 第19-20页 |
| 1.3.3 微生物转化甾体的方法 | 第20-21页 |
| 1.4 甾醇侧链降解反应 | 第21-27页 |
| 1.4.1 植物甾醇侧链降解产物雄甾烯二酮 | 第21-22页 |
| 1.4.2 甾醇降解原料 | 第22-24页 |
| 1.4.3 微生物降解甾醇侧链过程 | 第24-25页 |
| 1.4.4 微生物降解植物甾醇侧链中存在的主要问题 | 第25-26页 |
| 1.4.5 微生物降解植物甾醇侧链反应研究现状 | 第26-27页 |
| 1.5 强化甾体微生物转化效率的策略 | 第27-32页 |
| 1.5.1 强化甾体微生物转化效率的常用方法 | 第27-30页 |
| 1.5.2 新型两相体系及在甾体化合物微生物转化中的应用 | 第30-32页 |
| 1.6 本文研究内容及目标 | 第32-34页 |
| 第二章 双水相体系中分枝杆菌生长细胞降解植物甾醇 | 第34-48页 |
| 2.1 引言 | 第34页 |
| 2.2 实验材料与仪器 | 第34-36页 |
| 2.2.1 试剂 | 第34-35页 |
| 2.2.2 菌种 | 第35页 |
| 2.2.3 培养基 | 第35-36页 |
| 2.2.4 仪器及设备 | 第36页 |
| 2.3 分析方法 | 第36-38页 |
| 2.3.1 AD标准品的HPLC谱图 | 第36-37页 |
| 2.3.2 产物AD标准曲线绘制 | 第37页 |
| 2.3.3 HPLC法测定发酵液中产物AD的含量 | 第37-38页 |
| 2.4 实验方法 | 第38-39页 |
| 2.4.1 菌种的活化培养 | 第38页 |
| 2.4.2 双水相体系的制备 | 第38页 |
| 2.4.3 双水相体系中分配系数的测定 | 第38-39页 |
| 2.4.4 双水相体系中分枝杆菌萃取发酵生产AD | 第39页 |
| 2.5 结果与讨论 | 第39-46页 |
| 2.5.1 不同分子量PEG对分枝杆菌细胞的毒害性 | 第39-40页 |
| 2.5.2 PEG/盐体系 | 第40-41页 |
| 2.5.3 PEG/葡聚糖体系 | 第41-42页 |
| 2.5.4 表面活性剂的种类对AD生产的影响 | 第42-43页 |
| 2.5.5 表面活性剂的添加量对AD生产的影响 | 第43-44页 |
| 2.5.6 溶氧量对AD生产的影响 | 第44-45页 |
| 2.5.7 底物浓度对AD生产的影响 | 第45页 |
| 2.5.8 初步放大实验 | 第45-46页 |
| 2.6 本章小结 | 第46-48页 |
| 第三章 植物油/水两相体系中分枝杆菌静息细胞降解植物甾醇 | 第48-62页 |
| 3.1 引言 | 第48-49页 |
| 3.2 实验材料与仪器 | 第49页 |
| 3.2.1 试剂 | 第49页 |
| 3.2.2 菌种 | 第49页 |
| 3.2.3 培养基 | 第49页 |
| 3.2.4 仪器和设备 | 第49页 |
| 3.3 分析方法 | 第49-50页 |
| 3.3.1 产物AD标准曲线绘制 | 第49页 |
| 3.3.2 HPLC法测定发酵液中产物AD的含量 | 第49-50页 |
| 3.4 实验方法 | 第50页 |
| 3.4.1 菌体的活化培养 | 第50页 |
| 3.4.2 静息细胞的制备 | 第50页 |
| 3.4.3 催化反应体系制备 | 第50页 |
| 3.5 结果与讨论 | 第50-59页 |
| 3.5.1 植物油/水两相体系的构建 | 第50-52页 |
| 3.5.2 静息细胞培养时间确定 | 第52-53页 |
| 3.5.3 静息细胞转化植物甾醇的时间曲线 | 第53-55页 |
| 3.5.4 大豆油/水两相系统中相比对生物转化的影响 | 第55-56页 |
| 3.5.5 大豆油/水两相系统中溶氧量对生物转化的影响 | 第56-57页 |
| 3.5.6 大豆油/水两相系统中温度对生物转化的影响 | 第57页 |
| 3.5.7 大豆油/水两相系统中底物浓度对生物转化的影响 | 第57-58页 |
| 3.5.8 大豆油/水两相系统中细胞浓度对生物转化的影响 | 第58-59页 |
| 3.6 本章小结 | 第59-62页 |
| 第四章 植物油/水两相体系中分枝杆菌固定化细胞解植物甾醇 | 第62-74页 |
| 4.1 引言 | 第62-63页 |
| 4.2 实验材料与仪器 | 第63页 |
| 4.2.1 试剂 | 第63页 |
| 4.2.2 菌种 | 第63页 |
| 4.2.3 培养基 | 第63页 |
| 4.2.4 仪器和设备 | 第63页 |
| 4.3 分析方法 | 第63页 |
| 4.3.1 产物AD标准曲线绘制 | 第63页 |
| 4.3.2 HPLC法测定发酵液中产物AD的含量 | 第63页 |
| 4.4 实验方法 | 第63-65页 |
| 4.4.1 菌体的活化培养 | 第63-64页 |
| 4.4.2 分枝杆菌细胞固定化 | 第64-65页 |
| 4.4.2.1 丝瓜络和硅藻土吸附法 | 第64页 |
| 4.4.2.2 海藻酸钙包埋法 | 第64-65页 |
| 4.4.3 傅里叶变换红外光谱 | 第65页 |
| 4.4.4 扫描电子显微镜 | 第65页 |
| 4.4.5 固定化分枝杆菌细胞催化的操作稳定性 | 第65页 |
| 4.4.6 固定化分枝杆菌细胞的储存稳定性 | 第65页 |
| 4.5 结果与讨论 | 第65-73页 |
| 4.5.1 固定化方法的选择 | 第65-66页 |
| 4.5.2 固定化分枝杆菌的表征 | 第66-68页 |
| 4.5.3 固定化细胞降解植物甾醇的转化曲线 | 第68-69页 |
| 4.5.4 接种量对AD产量的影响 | 第69-70页 |
| 4.5.5 丝瓜络的添加量对AD产量的影响 | 第70-71页 |
| 4.5.6 丝瓜络固定化分枝杆菌细胞的操作稳定性 | 第71-72页 |
| 4.5.7 丝瓜络固定化分枝杆菌细胞的储存稳定性 | 第72-73页 |
| 4.6 本章结论 | 第73-74页 |
| 第五章 结论与展望 | 第74-76页 |
| 5.1 结论 | 第74-75页 |
| 5.2 展望 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-87页 |
| 作者简介 | 第87页 |
