摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-12页 |
1 绪论 | 第12-23页 |
·纳米技术研究概况 | 第12-13页 |
·壳聚糖纳米粒制备方法的研究 | 第13-15页 |
·壳聚糖纳米粒制备过程中出现的问题及解决方法 | 第15页 |
·金黄色葡萄球菌生物被膜的研究现状 | 第15-21页 |
·研究目的意义 | 第21页 |
·研究内容 | 第21-23页 |
2 脂肽羧甲基壳聚糖纳米粒的制备及表征 | 第23-30页 |
·前言 | 第23页 |
·材料和仪器 | 第23-24页 |
·材料和试剂 | 第23-24页 |
·仪器和设备 | 第24页 |
·方法 | 第24-25页 |
·抗菌脂肽的制备 | 第24页 |
·过氧化氢降解制备脂肽羧甲基壳聚糖纳米粒 | 第24页 |
·纳米粒扫描电镜观察 | 第24-25页 |
·溶解性测定 | 第25页 |
·稳定性测定 | 第25页 |
·粘度测定 | 第25页 |
·乳化性能测定 | 第25页 |
·红外光谱分析 | 第25页 |
·结果与分析 | 第25-29页 |
·纳米粒扫描电镜观察 | 第25-26页 |
·溶解性 | 第26-27页 |
·稳定性 | 第27页 |
·相对粘度 | 第27-28页 |
·乳化性能 | 第28页 |
·纳米粒红外光谱图 | 第28-29页 |
·讨论 | 第29页 |
·小结 | 第29-30页 |
3 脂肽羧甲基壳聚糖纳米粒的抗菌性能研究 | 第30-37页 |
·前言 | 第30页 |
·材料和仪器 | 第30-31页 |
·材料和试剂 | 第30页 |
·仪器和设备 | 第30-31页 |
·方法 | 第31页 |
·MIC 值与 MBC 值的测定 | 第31页 |
·抑菌活性测定 | 第31页 |
·不同浓度纳米粒对金黄色葡萄球菌和大肠杆菌的影响 | 第31页 |
·pH 对纳米粒抑菌性能的影响 | 第31页 |
·结果与分析 | 第31-35页 |
·MIC 值与 MBC 值 | 第31-32页 |
·抑菌活性 | 第32-33页 |
·不同浓度纳米粒对金黄色葡萄球菌和大肠杆菌的影响 | 第33-34页 |
·pH 对纳米粒抑菌性能的影响 | 第34-35页 |
·讨论 | 第35-36页 |
·小结 | 第36-37页 |
4 脂肽羧甲基壳聚糖纳米粒对金黄色葡萄球菌生物被膜的控制 | 第37-48页 |
·前言 | 第37页 |
·材料和仪器 | 第37-38页 |
·材料和试剂 | 第37-38页 |
·仪器和设备 | 第38页 |
·方法 | 第38-40页 |
·生物被膜的检测 | 第38页 |
·生物被膜菌及游离菌的检测 | 第38-39页 |
·纳米粒对生物被膜形成的抑制 | 第39页 |
·纳米粒对被膜菌生长的抑制 | 第39-40页 |
·对生物被膜的清除 | 第40页 |
·对被膜菌的清除 | 第40页 |
·扫描电镜观察 | 第40页 |
·结果与分析 | 第40-46页 |
·生物被膜的形成及被膜菌的生长 | 第40-41页 |
·纳米粒对生物被膜形成的抑制 | 第41-42页 |
·纳米粒对被膜菌生长的抑制 | 第42-45页 |
·对生物被膜及被膜菌的清除 | 第45-46页 |
·讨论 | 第46-47页 |
·小结 | 第47-48页 |
5 脂肽羧甲基壳聚糖纳米粒对游离态与被膜态金葡菌产毒控制作用 | 第48-56页 |
·前言 | 第48页 |
·材料和仪器 | 第48-49页 |
·材料和试剂 | 第48页 |
·仪器和设备 | 第48-49页 |
·方法 | 第49-50页 |
·游离态与被膜态金葡菌随时间的产毒变化 | 第49页 |
·培养条件对游离态与被膜态金葡菌的产毒影响 | 第49-50页 |
·纳米粒对游离态与被膜态金葡菌的产毒影响 | 第50页 |
·结果与分析 | 第50-53页 |
·游离态与被膜态金葡菌的生长与产毒 | 第50-51页 |
·培养条件对游离态与被膜态金葡菌的产毒影响 | 第51-53页 |
·纳米粒对游离态与被膜态金葡菌的产毒影响 | 第53页 |
·讨论 | 第53-55页 |
·小结 | 第55-56页 |
6 总结论及展望 | 第56-58页 |
·总结论 | 第56页 |
·创新点 | 第56-57页 |
·展望 | 第57-58页 |
参考文献 | 第58-66页 |
致谢 | 第66-67页 |
作者简介 | 第67-68页 |
导师简介 | 第68页 |