摘要 | 第4-6页 |
abstract | 第6-9页 |
第1章 引言 | 第15-33页 |
1.1 深海微生物 | 第15-17页 |
1.1.1 深海环境 | 第15页 |
1.1.2 深海微生物资源调查 | 第15页 |
1.1.3 深海微生物分离培养 | 第15-16页 |
1.1.4 深海微生物多样性 | 第16-17页 |
1.1.5 深海微生物资源开发 | 第17页 |
1.2 火色杆菌 | 第17-18页 |
1.3 琼胶酶 | 第18-20页 |
1.3.1 琼胶酶分类 | 第18-19页 |
1.3.2 琼胶酶微生物来源 | 第19页 |
1.3.3 重组琼胶酶 | 第19页 |
1.3.4 重组酶高效表达优化策略 | 第19-20页 |
1.3.5 琼胶酶的应用 | 第20页 |
1.4 龙须菜 | 第20-21页 |
1.5 琼胶寡糖 | 第21-22页 |
1.6 微生物发酵生成琼胶寡糖 | 第22-26页 |
1.6.1 琼胶的微生物代谢途径 | 第22-23页 |
1.6.2 火色杆菌产琼胶寡糖 | 第23页 |
1.6.3 发酵工艺优化 | 第23-25页 |
1.6.4 菌株生长模型 | 第25-26页 |
1.7 微生物基因组学研究进展 | 第26-28页 |
1.7.1 基因组测序技术 | 第26-27页 |
1.7.2 微生物基因组学 | 第27页 |
1.7.3 微生物基因组预测与注释 | 第27-28页 |
1.7.4 微生物基因组的应用 | 第28页 |
1.8 转录组学研究进展 | 第28-29页 |
1.8.1 转录组学测序技术 | 第28页 |
1.8.2 转录组学的发展趋势 | 第28-29页 |
1.8.3 微生物转录组的应用 | 第29页 |
1.9 课题的研究思路和主要研究内容 | 第29-33页 |
第2章 火色杆菌扩大培养及生长动力学研究 | 第33-49页 |
2.1 材料和方法 | 第34-37页 |
2.1.1 材料 | 第34页 |
2.1.2 主要仪器与试剂 | 第34页 |
2.1.3 方法 | 第34-37页 |
2.2 结果与讨论 | 第37-48页 |
2.2.1 以摇瓶种子生长条件扩大到10L罐培养 | 第37-38页 |
2.2.2 添加琼胶对10L罐培养的影响 | 第38-39页 |
2.2.3 pH对10L罐培养的影响 | 第39页 |
2.2.4 NaCl对10L罐培养的影响 | 第39-40页 |
2.2.5 搅拌转速对10L罐培养的影响 | 第40-41页 |
2.2.6 通气量对10L罐培养的影响 | 第41-42页 |
2.2.7 10 L罐培养工艺的确定 | 第42-43页 |
2.2.8 菌株WPAGA1生长动力学模型 | 第43-45页 |
2.2.9 200 L罐扩大培养菌株WPAGA | 第45-46页 |
2.2.10 移种阶段的确定 | 第46-48页 |
2.3 本章小结 | 第48-49页 |
第3章 龙须菜发酵产寡糖中试规模条件优化 | 第49-65页 |
3.1 材料和方法 | 第50-53页 |
3.1.1 材料 | 第50页 |
3.1.2 主要仪器与试剂 | 第50页 |
3.1.3 方法 | 第50-53页 |
3.2 结果与讨论 | 第53-64页 |
3.2.1 龙须菜干粉浓度对产寡糖的影响 | 第53-55页 |
3.2.2 碳氮比对产寡糖的影响 | 第55页 |
3.2.3 温度对产寡糖的影响 | 第55-56页 |
3.2.4 两阶段温度发酵策略对产寡糖的影响 | 第56-57页 |
3.2.5 pH对产寡糖的影响 | 第57-58页 |
3.2.6 搅拌转速对产寡糖的影响 | 第58-60页 |
3.2.7 通气量对产寡糖的影响 | 第60-61页 |
3.2.8 龙须菜发酵产寡糖过程流变学特性研究 | 第61-62页 |
3.2.9 1 m~3发酵罐的放大实验 | 第62-64页 |
3.3 本章小结 | 第64-65页 |
第4章 火色杆菌基因组及转录组测序分析 | 第65-81页 |
4.1 材料和方法 | 第65-69页 |
4.1.1 材料 | 第65-66页 |
4.1.2 主要仪器与试剂 | 第66页 |
4.1.3 方法 | 第66-69页 |
4.2 结果与讨论 | 第69-80页 |
4.2.1 菌株WPAGA1全基因组序列分析 | 第69-72页 |
4.2.2 原始数据统计及组装 | 第72-74页 |
4.2.3 Unigene注释结果分析 | 第74-75页 |
4.2.4 显著差异基因GO功能注释分析 | 第75-76页 |
4.2.5 显著差异基因KEGGpathway富集分析 | 第76-77页 |
4.2.6 琼胶降解相关酶转录水平分析 | 第77-79页 |
4.2.7 菌株WPAGA1中琼胶代谢通路推测 | 第79-80页 |
4.3 本章小结 | 第80-81页 |
第5章 火色杆菌琼胶酶的表达及酶学性质 | 第81-95页 |
5.1 材料和方法 | 第81-86页 |
5.1.1 材料 | 第81-83页 |
5.1.2 主要试剂和仪器 | 第83页 |
5.1.3 方法 | 第83-86页 |
5.2 结果与讨论 | 第86-92页 |
5.2.1 基因aga0950的序列分析 | 第86-87页 |
5.2.2 重组酶的表达与纯化 | 第87-88页 |
5.2.3 酶解产物的分析 | 第88-89页 |
5.2.4 重组酶的结构预测 | 第89-90页 |
5.2.5 重组酶酶学性质分析 | 第90-92页 |
5.3 本章小结 | 第92-95页 |
第6章 重组大肠杆菌产琼胶酶Aga0950的条件优化 | 第95-105页 |
6.1 材料和方法 | 第95-98页 |
6.1.1 材料 | 第95-96页 |
6.1.2 主要试剂和仪器 | 第96页 |
6.1.3 方法 | 第96-98页 |
6.2 结果与讨论 | 第98-104页 |
6.2.1 不同比生长速率的补料发酵 | 第98-100页 |
6.2.2 诱导温度对细胞生长和琼胶酶的影响 | 第100-101页 |
6.2.3 IPTG浓度对细胞生长和琼胶酶的影响 | 第101-102页 |
6.2.4 连续流加乳糖诱导表达重组琼胶酶 | 第102-104页 |
6.3 本章小结 | 第104-105页 |
第7章 寡糖对荔枝果实贮藏品质的影响 | 第105-115页 |
7.1 材料和方法 | 第105-107页 |
7.1.1 材料 | 第105页 |
7.1.2 主要试剂和仪器 | 第105-106页 |
7.1.3 方法 | 第106-107页 |
7.2 结果与讨论 | 第107-113页 |
7.2.1 寡糖对荔枝好果率的影响 | 第107-108页 |
7.2.2 寡糖对荔枝果实失重的影响 | 第108-109页 |
7.2.3 寡糖对荔枝果肉可溶性固形物的影响 | 第109页 |
7.2.4 寡糖对荔枝果肉可滴定酸的影响 | 第109-110页 |
7.2.5 寡糖对荔枝果肉维生素C的影响 | 第110-111页 |
7.2.6 寡糖对荔枝果实果皮多酚氧化酶的影响 | 第111-112页 |
7.2.7 寡糖对荔枝果实果皮过氧化物酶的影响 | 第112-113页 |
7.3 本章小结 | 第113-115页 |
第8章 总结与展望 | 第115-117页 |
8.1 全文总结 | 第115-116页 |
8.2 展望 | 第116-117页 |
参考文献 | 第117-129页 |
致谢 | 第129-131页 |
附录A | 第131-133页 |
个人简历、在学期间发表的论文与研究成果 | 第133-136页 |