| 摘要 | 第3-7页 |
| Abstract | 第7-11页 |
| 第1章 引言 | 第16-30页 |
| 1.1 QS系统类别 | 第17-20页 |
| 1.1.1 革兰氏阴性细菌的QS系统 | 第17页 |
| 1.1.2 革兰氏阳性细菌的QS系统 | 第17-18页 |
| 1.1.3 细菌种间QS系统 | 第18页 |
| 1.1.4 细菌的其他QS机制 | 第18-20页 |
| 1.2 食品腐败与QS | 第20-22页 |
| 1.2.1 动物性食品腐败中的QS | 第20-21页 |
| 1.2.2 果蔬腐烂中的QS | 第21-22页 |
| 1.3 群体感应抑制剂(QSI) | 第22-29页 |
| 1.3.1 果蔬来源QSI | 第23-24页 |
| 1.3.2 中草药来源QSI | 第24-26页 |
| 1.3.3 酶类QSI | 第26-28页 |
| 1.3.4 人工合成QSI | 第28页 |
| 1.3.5 其他QSI | 第28-29页 |
| 1.4 本文研究的目的和意义 | 第29-30页 |
| 第2章 LC-MS/MS定量检测AHLs信号分子 | 第30-40页 |
| 2.1 前言 | 第30-31页 |
| 2.2 材料和方法 | 第31-32页 |
| 2.2.1 菌株 | 第31页 |
| 2.2.2 主要试剂和培养基 | 第31页 |
| 2.2.3 仪器 | 第31页 |
| 2.2.4 细菌培养 | 第31页 |
| 2.2.5 信号分子的提取 | 第31-32页 |
| 2.2.6 生物报告菌检测信号分子 | 第32页 |
| 2.2.7 LC-MS/MS检测信号分子 | 第32页 |
| 2.2.8 数据处理和分析 | 第32页 |
| 2.3 结果与分析 | 第32-38页 |
| 2.3.1 生物报告菌检测AHLs信号分子 | 第32-33页 |
| 2.3.2 LC-MS/MS条件优化 | 第33-35页 |
| 2.3.3 LC-MS/MS检测6株细菌的AHLs | 第35-38页 |
| 2.4 本章小结 | 第38-40页 |
| 第3章 GC-MS定量检测DKPs信号分子 | 第40-50页 |
| 3.1 前言 | 第40页 |
| 3.2 材料与方法 | 第40-41页 |
| 3.2.1 细菌及其培养条件 | 第40-41页 |
| 3.2.2 主要培养基 | 第41页 |
| 3.2.3 主要试剂 | 第41页 |
| 3.2.4 主要仪器 | 第41页 |
| 3.3 实验方法 | 第41-43页 |
| 3.3.1 GC-MS法定性分析 | 第41-42页 |
| 3.3.2 SIM条件确定 | 第42页 |
| 3.3.3 标准曲线及检测限、定量限 | 第42页 |
| 3.3.4 精密度和准确度 | 第42页 |
| 3.3.5 回收率实验 | 第42页 |
| 3.3.6 DKPs信号分子的提取优化 | 第42-43页 |
| 3.3.7 培养基的选择 | 第43页 |
| 3.3.8 数据处理和分析 | 第43页 |
| 3.4 结果与分析 | 第43-49页 |
| 3.4.1 GC色谱条件优化 | 第43-44页 |
| 3.4.2 标样保留时间和监测离子通道优化 | 第44-45页 |
| 3.4.3 回归方程 | 第45页 |
| 3.4.4 准确度和精密度 | 第45-47页 |
| 3.4.5 萃取溶剂对DKPs提取的影响 | 第47-48页 |
| 3.4.6 培养基对DKPs产生的影响 | 第48页 |
| 3.4.7 GC-MS分析P.aeruginosa和S.baltica的DKPs | 第48-49页 |
| 3.5 本章小结 | 第49-50页 |
| 第4章 冷藏大黄鱼特定腐败菌的QS分析 | 第50-60页 |
| 4.1 前言 | 第50页 |
| 4.2 材料与方法 | 第50-54页 |
| 4.2.1 原料与试剂 | 第50-51页 |
| 4.2.2 主要仪器 | 第51页 |
| 4.2.3 样品处理 | 第51页 |
| 4.2.4 腐败指标 | 第51-52页 |
| 4.2.4.1 细菌总数 | 第51页 |
| 4.2.4.2 TVB-N测定 | 第51-52页 |
| 4.2.4.3 TMA测定 | 第52页 |
| 4.2.5 鱼肉中信号分子动态分析 | 第52-53页 |
| 4.2.5.1 鱼肉中AHLs信号分子提取和检测 | 第52页 |
| 4.2.5.2 鱼肉中AI-2信号分子提取和检测 | 第52-53页 |
| 4.2.5.3 鱼肉中DKPs信号分子提取和检测 | 第53页 |
| 4.2.6 希瓦氏菌分离株AI-2信号分子测定 | 第53页 |
| 4.2.7 希瓦氏菌分离株DKPs信号分子测定 | 第53页 |
| 4.2.8 希瓦氏菌生长曲线绘制 | 第53页 |
| 4.2.9 数据处理和分析 | 第53-54页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第54-58页 |
| 4.3.1 大黄鱼4℃冷藏期间腐败菌总数的变化 | 第54页 |
| 4.3.2 大黄鱼4℃冷藏期间TVB-N和TMA变化 | 第54-55页 |
| 4.3.3 大黄鱼4℃冷藏期间AI-2变化 | 第55-56页 |
| 4.3.4 希瓦氏菌大黄鱼分离株中AI-2和DKPs活性 | 第56-57页 |
| 4.3.5 S.baltica中AI-2和DKPs形成规律 | 第57-58页 |
| 4.4 本章小结 | 第58-60页 |
| 第5章 TP对S.baltica QS系统及其致腐能力的影响 | 第60-74页 |
| 5.1 前言 | 第60页 |
| 5.2 材料与仪器 | 第60-62页 |
| 5.2.1 菌株 | 第60-61页 |
| 5.2.2 主要培养基 | 第61页 |
| 5.2.3 主要试剂 | 第61页 |
| 5.2.4 主要仪器 | 第61-62页 |
| 5.3 实验方法 | 第62-65页 |
| 5.3.1 TP对S.baltica最小抑菌浓度(MIC) | 第62页 |
| 5.3.2 TP对S.baltica抗QS的处理 | 第62页 |
| 5.3.3 生物被膜分析 | 第62-63页 |
| 5.3.3.1 结晶紫定量测定 | 第62页 |
| 5.3.3.2 EPS测定 | 第62-63页 |
| 5.3.3.3 电子扫描显微镜(SEM) | 第63页 |
| 5.3.4 游动能力的检测 | 第63页 |
| 5.3.5 胞外蛋白酶的检测 | 第63页 |
| 5.3.6 TMA含量 | 第63-64页 |
| 5.3.7 TMAO还原酶基因torA基因的表达 | 第64页 |
| 5.3.8 TP成分分析 | 第64页 |
| 5.3.9 EGCG抗S.baltica QS活性及其致腐能力试验 | 第64页 |
| 5.3.10 数据处理和分析 | 第64-65页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第65-73页 |
| 5.4.1 TP对S.baltica生长的影响 | 第65页 |
| 5.4.2 TP抑制S.baltica中AI-2和DKPs信号分子 | 第65-67页 |
| 5.4.3 TP抑制S.baltica的生物被膜 | 第67-68页 |
| 5.4.4 TP对S.baltica游动能力的影响 | 第68-69页 |
| 5.4.5 TP抑制S.baltica胞外蛋白酶活性 | 第69-70页 |
| 5.4.6 TP抑制S.baltica中TMA的形成 | 第70页 |
| 5.4.7 TP成分分析 | 第70-72页 |
| 5.4.8 EGCG抑制S.baltica QS系统及其调控功能 | 第72-73页 |
| 5.5 本章小结 | 第73-74页 |
| 第6章 总结、展望和创新点 | 第74-76页 |
| 6.1 总结 | 第74页 |
| 6.2 创新点 | 第74页 |
| 6.3 展望 | 第74-76页 |
| 参考文献 | 第76-90页 |
| 致谢 | 第90-92页 |
| 硕士期间完成的论文 | 第92-94页 |
