| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-11页 |
| 第1章 绪论 | 第12-18页 |
| 1.1 单增李斯特氏菌及金黄色葡萄球菌的概述 | 第12页 |
| 1.2 抗菌肽的概述 | 第12-13页 |
| 1.3 抗菌肽的抑菌机理 | 第13-14页 |
| 1.4 大豆球蛋白抗菌多肽的概述 | 第14-15页 |
| 1.4.1 大豆球蛋白抗菌多肽(GAP)简介 | 第14页 |
| 1.4.2 GAP的特性及应用 | 第14-15页 |
| 1.5 鱼糜及产品的概述 | 第15-16页 |
| 1.6 立题意义及主要内容 | 第16页 |
| 1.7 本课题研究的技术路线 | 第16-18页 |
| 第2章 大豆球蛋白抗菌多肽对单增李斯特氏菌和金黄色葡萄球菌的抗菌特性研究 | 第18-22页 |
| 2.1 引言 | 第18页 |
| 2.2 试验材料与设备 | 第18-19页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第18页 |
| 2.2.2 仪器与设备 | 第18-19页 |
| 2.3 研究方法 | 第19-20页 |
| 2.3.1 试验试剂的制备 | 第19页 |
| 2.3.2 单增李斯特氏菌和金黄色葡萄球菌的培养 | 第19页 |
| 2.3.3 单增李斯特氏菌及金黄色葡萄球菌的抑菌圈测定 | 第19-20页 |
| 2.3.4 单增李斯特氏菌及金黄色葡萄球菌的最小抑菌浓度测定 | 第20页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第20-21页 |
| 2.4.1 GAP对单增李斯特氏菌和金黄色葡萄球菌的抑制效果 | 第20-21页 |
| 2.4.2 GAP对单增李斯特氏菌和金黄色葡萄球菌的抗菌活性 | 第21页 |
| 2.5 本章小结 | 第21-22页 |
| 第3章 大豆球蛋白抗菌多肽对单增李斯特氏菌的抑制机制的研究 | 第22-32页 |
| 3.1 引言 | 第22页 |
| 3.2 试验材料与设备 | 第22-23页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第22页 |
| 3.2.2 仪器与设备 | 第22-23页 |
| 3.3 研究方法 | 第23-25页 |
| 3.3.1 试验试剂的制备 | 第23页 |
| 3.3.2 单增李斯特氏菌细胞FSC/SSC测定 | 第23页 |
| 3.3.3 单增李斯特氏菌细胞表面Zeta电位的测定 | 第23页 |
| 3.3.4 单增李斯特氏菌细胞膜去极化的测定 | 第23页 |
| 3.3.5 单增李斯特氏菌细胞内核酸及蛋白类泄露的测定 | 第23-24页 |
| 3.3.6 单增李斯特氏菌细胞DNA的提取和检测 | 第24页 |
| 3.3.7 单增李斯特氏菌呼吸链脱氢酶活性的测定。 | 第24页 |
| 3.3.8 单增李斯特氏菌ATP酶活性的测定 | 第24页 |
| 3.3.9 单增李斯特氏菌呼吸速率的测定 | 第24-25页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第25-31页 |
| 3.4.1 GAP对单增李斯特氏菌大小和粒度的影响 | 第25-26页 |
| 3.4.2 GAP对单增李斯特氏菌细胞表面Zeta电位的影响 | 第26-27页 |
| 3.4.3 GAP对单增李斯特氏菌细胞膜去极化的影响 | 第27页 |
| 3.4.4 GAP对单增李斯特氏菌细胞内核酸及蛋白类泄露的影响 | 第27-28页 |
| 3.4.5 GAP对单增李斯特氏菌菌体DNA的影响 | 第28-29页 |
| 3.4.6 GAP对单增李斯特氏菌呼吸链脱氢酶的影响 | 第29页 |
| 3.4.7 GAP对单增李斯特氏菌ATP酶的影响 | 第29-30页 |
| 3.4.8 GAP对单增李斯特氏菌呼吸代谢的影响 | 第30-31页 |
| 3.5 本章小结 | 第31-32页 |
| 第4章 大豆球蛋白抗菌多肽对金黄色葡萄球菌的抑制机制的研究 | 第32-50页 |
| 4.1 引言 | 第32页 |
| 4.2 试验材料与设备 | 第32-33页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第32-33页 |
| 4.2.2 仪器与设备 | 第33页 |
| 4.3 研究方法 | 第33-36页 |
| 4.3.1 试验试剂的制备 | 第33-34页 |
| 4.3.2 流式细胞仪CFDA/PI双染测定金黄色葡萄球菌细胞的损伤 | 第34页 |
| 4.3.3 金黄色葡萄球菌FSC/SSC测定 | 第34页 |
| 4.3.4 流式细胞仪AnnexinV-FITC/PI双染测定金黄色葡萄球菌的凋亡 | 第34页 |
| 4.3.5 金黄色葡萄球菌扫描电镜检测 | 第34-35页 |
| 4.3.6 金黄色葡萄球菌透射电镜检测 | 第35页 |
| 4.3.7 金黄色葡萄球菌K+泄露的测定 | 第35页 |
| 4.3.8 金黄色葡萄球菌ATP酶活性的测定 | 第35-36页 |
| 4.3.9 金黄色葡萄球菌总蛋白质的检测 | 第36页 |
| 4.3.10 金黄色葡萄球菌DNA的提取和检测 | 第36页 |
| 4.3.11 圆二色谱测定金黄色葡萄球菌DNA的结构 | 第36页 |
| 4.3.12 金黄色葡萄球菌活性氧(ROS)产生的检测 | 第36页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第36-48页 |
| 4.4.1 GAP对金黄色葡萄球菌细胞表面形态的影响 | 第36-38页 |
| 4.4.2 GAP对金黄色葡萄球菌细胞内微观变化的影响 | 第38-39页 |
| 4.4.3 GAP对金黄色葡萄球菌大小和粒度的影响 | 第39页 |
| 4.4.4 GAP对金黄色葡萄球菌K+离子泄露的影响 | 第39-40页 |
| 4.4.5 GAP对金黄色葡萄球菌细胞死亡和损伤的影响 | 第40-41页 |
| 4.4.6 GAP对金黄色葡萄球菌非特异性酯酶及细胞膜的影响 | 第41-43页 |
| 4.4.7 GAP对金黄色葡萄球菌细胞ATP酶活性的影响 | 第43页 |
| 4.4.8 GAP对金黄色葡萄球菌细胞总蛋白的影响 | 第43-44页 |
| 4.4.9 GAP对金黄色葡萄球菌DNA的影响 | 第44-45页 |
| 4.4.10 GAP对金黄色葡萄球菌活性氧(ROS)产生的影响 | 第45-46页 |
| 4.4.11 GAP对金黄色葡萄球菌凋亡的影响 | 第46-48页 |
| 4.5 本章小结 | 第48-50页 |
| 第5章 大豆球蛋白抗菌多肽对蓝点马鲛鱼鱼糜物理化学特性及微生物指标的影响 | 第50-62页 |
| 5.1 引言 | 第50页 |
| 5.2 试验材料及设备 | 第50-51页 |
| 5.2.1 试验材料 | 第50-51页 |
| 5.2.2 实验设备 | 第51页 |
| 5.3 研究方法 | 第51-54页 |
| 5.3.1 试验试剂的制备 | 第51页 |
| 5.3.2 蓝点马鲛鱼鱼糜(SNS)的制备和GAP的处理 | 第51页 |
| 5.3.3 SNS质构特性的测定 | 第51-52页 |
| 5.3.4 SNS白度的测定 | 第52页 |
| 5.3.5 SNS中 pH值的测定 | 第52页 |
| 5.3.6 SNS中 TVB-N的测定 | 第52页 |
| 5.3.7 SNS可溶性蛋白凝胶电泳 | 第52-53页 |
| 5.3.8 SNS中 TVC的测定 | 第53页 |
| 5.3.9 SNS中 TBARs的测定 | 第53页 |
| 5.3.10 SNS中感官指标的的测定 | 第53页 |
| 5.3.11 SNS中特定致病菌单增李斯特氏菌的测定 | 第53页 |
| 5.3.12 SNS中特定致病菌金黄色葡萄球菌的测定 | 第53-54页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第54-61页 |
| 5.4.1 GAP对 SNS质构的影响 | 第54页 |
| 5.4.2 GAP对 SNS在贮藏期间白度的影响 | 第54-55页 |
| 5.4.3 GAP对 SNS在贮藏期间pH和 TVB-N的影响 | 第55-56页 |
| 5.4.4 GAP对 SNS在贮藏期间可溶性蛋白的影响 | 第56-57页 |
| 5.4.5 GAP对 SNS在贮藏期间TVC的影响 | 第57-58页 |
| 5.4.6 GAP对 SNS在贮藏期间TBARs的影响 | 第58-59页 |
| 5.4.7 GAP对 SNS在贮藏期间的总体可接受度的影响 | 第59-60页 |
| 5.4.8 GAP对 SNS中特定致病菌单增李斯特氏菌的抑制效果 | 第60-61页 |
| 5.4.9 GAP对 SNS中特定致病菌金黄色葡萄球菌的抑制效果 | 第61页 |
| 5.5 本章小结 | 第61-62页 |
| 第6章 结论和展望 | 第62-64页 |
| 6.1 结论 | 第62页 |
| 6.2 展望 | 第62-64页 |
| 参考文献 | 第64-76页 |
| 致谢 | 第76-78页 |
| 在学期间主要科研成果 | 第78页 |
