| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 前言 | 第15-49页 |
| 1 海参资源概述 | 第15-18页 |
| 1.1 海参的分类 | 第15-16页 |
| 1.2 海参的形态特征 | 第16-17页 |
| 1.3 海参资源分布状况 | 第17-18页 |
| 1.3.1 世界海参资源分布 | 第17页 |
| 1.3.2 我国海参资源分布 | 第17-18页 |
| 2 海参生物活性成分研究 | 第18-23页 |
| 2.1 海参及其提取物的活性研究 | 第18-19页 |
| 2.2 海参多糖的结构及化学组成 | 第19-20页 |
| 2.2.1 海参多糖的生理活性 | 第20页 |
| 2.3 海参胶原蛋白以及活性肽 | 第20-21页 |
| 2.3.1 海参胶原蛋白的生化特性 | 第20-21页 |
| 2.3.2 海参胶原蛋白及胶原肽的生物活性 | 第21页 |
| 2.4 脂质 | 第21-23页 |
| 2.4.1 脂肪酸 | 第21-22页 |
| 2.4.2 类胡萝卜素 | 第22页 |
| 2.4.3 鞘糖脂 | 第22-23页 |
| 2.5 微量元素 | 第23页 |
| 3 海参皂苷的概述 | 第23-27页 |
| 3.0 皂苷的分布 | 第23-24页 |
| 3.1 海参皂苷的分离纯化 | 第24-25页 |
| 3.1.1 海参皂苷的提取 | 第24页 |
| 3.1.2 大孔树脂层析 | 第24-25页 |
| 3.1.3 正丁醇萃取 | 第25页 |
| 3.1.4 硅胶柱层析 | 第25页 |
| 3.1.5 HPLC纯化 | 第25页 |
| 3.2 海参皂苷的生理功能 | 第25-27页 |
| 3.2.1 抗肿瘤活性 | 第26页 |
| 3.2.2 抗菌活性 | 第26-27页 |
| 3.2.3 溶血活性 | 第27页 |
| 3.2.4 调节生殖发育 | 第27页 |
| 3.2.5 其他活性 | 第27页 |
| 4 高尿酸血症概述 | 第27-37页 |
| 4.1 高尿酸血症临床表现 | 第27-28页 |
| 4.2 高尿酸血症流行病学 | 第28-29页 |
| 4.3 高尿酸血症的发病因素 | 第29-33页 |
| 4.3.1 尿酸在体内的生成及关键 | 第29-31页 |
| 4.3.2 尿酸在体内的排泄途径及相关的基因 | 第31-33页 |
| 4.3.2.1 尿酸盐阴离子交换转运体1 | 第31-32页 |
| 4.3.2.2 有机阴离子转运体1 | 第32页 |
| 4.3.2.3 葡萄糖转运体9 | 第32-33页 |
| 4.3.2.4 有机阳离子和肉毒碱转运体 | 第33页 |
| 4.4 高尿酸血症与其他疾病的关系 | 第33-35页 |
| 4.4.1. 高尿酸血症与心血管疾病 | 第33-34页 |
| 4.4.2 高尿酸血症与高血压 | 第34页 |
| 4.4.3 高尿酸血症与高血脂和糖尿病 | 第34-35页 |
| 4.5 高尿酸血症的临床治疗 | 第35-37页 |
| 5 立题依据及研究意义 | 第37-39页 |
| 参考文献 | 第39-49页 |
| 第一章 摄食不同种类海参对小鼠高尿酸血症的影响 | 第49-65页 |
| 1 实验材料和方法 | 第50-52页 |
| 1.1 实验材料 | 第50页 |
| 1.1.1 实验试剂 | 第50页 |
| 1.1.2 实验仪器 | 第50页 |
| 1.1.3 实验动物 | 第50页 |
| 1.2 实验方法 | 第50-52页 |
| 1.2.1 实验动物模型的建立 | 第50页 |
| 1.2.2 实验动物分组及其饲料的配制 | 第50-51页 |
| 1.2.3 动物实验 | 第51-52页 |
| 1.2.4 血清尿酸、肌酐及尿素氮浓度测定 | 第52页 |
| 1.2.5 肝脏酶活性测定 | 第52页 |
| 1.3 数据统计处理 | 第52页 |
| 2 实验结果 | 第52-57页 |
| 2.1 不同种类海参对模型小鼠体重的影响 | 第52-53页 |
| 2.2 不同种类海参对模型小鼠血清尿酸的影响 | 第53-54页 |
| 2.3 不同种类海参对模型小鼠肾脏指标的影响 | 第54-55页 |
| 2.4 不同海参对肝脏酶活性的影响 | 第55-57页 |
| 2.4.1 不同种类海参对肝脏XOD活性的影响 | 第55-56页 |
| 2.4.2 不同海参对肝脏ADA活性的影响 | 第56-57页 |
| 3 讨论 | 第57-61页 |
| 本章小结 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-65页 |
| 第二章 不同海参主要活性成分对小鼠高尿酸血症影响 | 第65-85页 |
| 第一节 海参主要活性成分对小鼠高尿酸血症改善作用 | 第65-70页 |
| 1 实验材料与方法 | 第66-69页 |
| 1.1 实验材料 | 第66页 |
| 1.1.1 实验试剂 | 第66页 |
| 1.1.2 实验仪器 | 第66页 |
| 1.1.3 实验动物 | 第66页 |
| 1.2 实验方法 | 第66-69页 |
| 1.2.1 动物分组及饲料配制 | 第66-68页 |
| 1.2.2 海参及其主要成分对小鼠肾脏指标的影响 | 第68-69页 |
| 3 讨论 | 第69-70页 |
| 第二节 海参活性成分改善小鼠高尿酸血症的机制研究 | 第70-81页 |
| 1 实验材料与方法 | 第71-73页 |
| 1.1 实验材料 | 第71页 |
| 1.1.1 实验所需试剂 | 第71页 |
| 1.1.2 实验所需仪器 | 第71页 |
| 1.1.3 实验动物 | 第71页 |
| 1.2 实验方法 | 第71-73页 |
| 1.2.1 肝脏酶活测定 | 第71页 |
| 1.2.2 肝脏尿酸代谢相关酶和肾脏尿酸代谢相关转运基因mRNA表达 | 第71-73页 |
| 1.3 实验数据统计处理 | 第73页 |
| 2 结果 | 第73-78页 |
| 2.1 海参活性成分对肝脏尿酸生成相关酶活性影响 | 第73-74页 |
| 2.1.1 海参的活性成分对XOD活性影响 | 第73页 |
| 2.1.2 海参活性成分对ADA活性影响 | 第73-74页 |
| 2.2 海参活性成分对尿酸生成肝脏酶相关mRNA表达影响 | 第74-75页 |
| 2.2.1 海参活性成分对尿酸生成肝脏相关XOD mRNA表达影响 | 第74页 |
| 2.2.2 海参活性成分对尿酸生成肝脏相关ADA mRNA表达影响 | 第74-75页 |
| 2.3 海参活性成分对肾脏相关转运体mRNA表达的影响 | 第75-78页 |
| 2.3.1 海参活性成分对尿酸相关肾脏转运载体GLUT9和URAT1 mRNA表达的影响 | 第75-76页 |
| 2.3.2 海参活性成分对肾脏OAT1 mRNA表达的影响 | 第76-77页 |
| 2.3.3 海参活性成分对肾脏OCTs mRNA以及OCTNs mRNA表达的影响 | 第77-78页 |
| 3 讨论 | 第78-81页 |
| 本章小结 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-85页 |
| 第三章 海参皂苷Holothurin A单体对肥胖小鼠尿酸代谢的改善作用研究 | 第85-103页 |
| 1 实验材料与方法 | 第87-89页 |
| 1.1 实验材料 | 第87页 |
| 1.1.1 实验试剂 | 第87页 |
| 1.1.2 实验仪器 | 第87页 |
| 1.1.3 实验动物 | 第87页 |
| 1.2 实验方法 | 第87-89页 |
| 1.2.1 海参皂苷单体HA的制备 | 第87-88页 |
| 1.2.2 动物分组及饲料配制 | 第88-89页 |
| 1.2.3 动物实验 | 第89页 |
| 1.2.4 小鼠血清尿酸、血清肌酐以及尿素氮浓度测定 | 第89页 |
| 1.2.5 小鼠肝脏酶活性测定 | 第89页 |
| 1.2.6 小鼠肝脏和肾脏尿酸代谢相关基因mRNA检测 | 第89页 |
| 1.3 实验数据统计处理 | 第89页 |
| 2 实验结果 | 第89-96页 |
| 2.1 海参皂苷HA对小鼠血尿酸浓度影响 | 第89页 |
| 2.2 HA对小鼠肌酐及尿酸氮水平影响 | 第89-90页 |
| 2.3 HA对尿酸生成肝脏相关酶活及mRNA表达的影响 | 第90-92页 |
| 2.3.1 HA对肝脏XOD活性及mRNA表达影响 | 第90-91页 |
| 2.3.2 HA对肝脏ADA活性的及mRNA表达影响 | 第91-92页 |
| 2.4 HA对肾脏尿酸相关离子转运体mRNA表达影响 | 第92-96页 |
| 2.4.1 HA对肾脏GLUT9 mRNA和URAT1 mRNA表达影响 | 第92-93页 |
| 2.4.2 HA对肾脏OAT1 mRNA表达影响 | 第93-94页 |
| 2.4.3 HA对肾脏尿酸相关转运载体OCTs mRNA、OCTNs mRNA表达影响 | 第94-96页 |
| 3 讨论 | 第96-98页 |
| 本章小结 | 第98-99页 |
| 参考文献 | 第99-103页 |
| 总结 | 第103-104页 |
| 本论文的特色及创新之处 | 第104-105页 |
| 博士在读期间发表的论文及专利 | 第105-106页 |
| 致谢 | 第106页 |
