摘要 | 第1-7页 |
Abstract | 第7-13页 |
1 前言 | 第13-21页 |
·副溶血弧菌概况 | 第13-15页 |
·副溶血弧菌生物学特性 | 第13页 |
·副溶血弧菌的危害及其主要危害因子 | 第13-15页 |
·细菌间的相互作用 | 第15-17页 |
·细菌菌群间的相互作用现象 | 第15页 |
·细菌菌群间相互作用的研究进展 | 第15-17页 |
·细菌的群体感应现象 | 第17-19页 |
·群体感应概况 | 第17页 |
·群体感应信号分子及其检测方法 | 第17-18页 |
·群体感应对细菌毒力因子的影响 | 第18页 |
·基因敲除技术在群体感应研究中的应用 | 第18-19页 |
·本研究的目的意义、研究内容与创新点 | 第19-21页 |
·研究目的与意义 | 第19-20页 |
·研究内容 | 第20页 |
·创新点 | 第20-21页 |
2 副溶血弧菌群体感应信号分子合成酶基因luxM、luxS敲除突变株的构建及其生物学特性研究 | 第21-43页 |
·材料与仪器 | 第21-24页 |
·菌株、质粒及引物 | 第21-23页 |
·试剂 | 第23页 |
·仪器与设备 | 第23-24页 |
·实验方法 | 第24-31页 |
·副溶血弧菌luxM、luxS基因敲除打靶载体的构建 | 第24-27页 |
·接合实验 | 第27页 |
·大肠杆菌E.coli DH5αλπ、E.coli β2155感受态细胞的制备 | 第27页 |
·大肠杆菌E.coli DH5αλπ、E.coli β2155感受态细胞的电转化 | 第27-28页 |
·副溶血弧菌luxM、luxS基因敲除菌株的筛选 | 第28-29页 |
·副溶血弧菌亲本株及其luxM、luxS基因敲除菌株的生物学特性比较 | 第29-31页 |
·数据分析 | 第31页 |
·结果 | 第31-40页 |
·副溶血弧菌luxM、luxS基因敲除打靶载体的构建 | 第31-33页 |
·副溶血弧菌luxM、luxS基因敲除菌株的筛选 | 第33-35页 |
·副溶血弧菌亲本株及其luxM、luxS基因敲除菌株的生物学特性比较 | 第35-40页 |
·讨论 | 第40-41页 |
·结论 | 第41-43页 |
3 腐败希瓦氏菌对副溶血弧菌亲本株及其群体感应信号分子合成酶基因缺失株毒力因子的作用效应比较 | 第43-58页 |
·材料与仪器 | 第43-44页 |
·材料 | 第43页 |
·试剂 | 第43-44页 |
·仪器设备 | 第44页 |
·实验方法 | 第44-46页 |
·腐败希瓦氏菌上清提取物的制备 | 第44页 |
·溶血效应共培养体系的建立 | 第44-45页 |
·腐败希瓦氏菌对副溶血弧菌生长的影响 | 第45页 |
·溶血实验 | 第45页 |
·耐热直接溶血毒素基因tdh表达量 | 第45页 |
·生物被膜共培养体系的建立 | 第45页 |
·结晶紫法检测生物被膜 | 第45页 |
·荧光原位杂交法检测生物被膜 | 第45-46页 |
·数据分析 | 第46页 |
·结果 | 第46-54页 |
·腐败希瓦氏菌对副溶血弧菌生长的影响 | 第46-47页 |
·溶血实验 | 第47-49页 |
·耐热直接溶血毒素基因tdh表达量 | 第49-51页 |
·结晶紫法检测生物被膜 | 第51-53页 |
·荧光原位杂交法检测生物被膜 | 第53-54页 |
·讨论 | 第54-56页 |
·结论 | 第56-58页 |
4 群体感应信号分子与腐败希瓦氏菌-副溶血弧菌作用效应的关联性 | 第58-74页 |
·材料与试剂 | 第58-59页 |
·材料 | 第58页 |
·试剂 | 第58-59页 |
·仪器设备 | 第59页 |
·实验方法 | 第59-60页 |
·溶血活性与信号分子的级联作用 | 第59页 |
·生物被膜与信号分子的级联作用 | 第59页 |
·LC-MS/MS法检测群体感应信号分子AHLs | 第59-60页 |
·数据分析 | 第60页 |
·结果 | 第60-71页 |
·溶血活性与信号分子的级联作用 | 第60-62页 |
·生物被膜与信号分子的级联作用 | 第62-63页 |
·LC-MS/MS检测群体感应信号分子AHLs | 第63-71页 |
·讨论 | 第71-72页 |
·结论 | 第72-74页 |
5 总结与展望 | 第74-77页 |
·总结 | 第74-75页 |
·不足之处与展望 | 第75-77页 |
参考文献 | 第77-87页 |
致谢 | 第87-88页 |
作者简介 | 第88-89页 |
导师简介 | 第89页 |