摘要 | 第4-5页 |
abstract | 第5页 |
第一章 综述 | 第10-20页 |
1.1 蜂房哈夫尼菌 | 第10-12页 |
1.1.1 蜂房哈夫尼菌概述 | 第10页 |
1.1.2 蜂房哈夫尼菌的危害 | 第10-12页 |
1.1.2.1 蜂房哈夫尼菌腐败 | 第10-11页 |
1.1.2.2 蜂房哈夫尼菌致病性 | 第11-12页 |
1.1.3 蜂房哈夫尼菌的应用 | 第12页 |
1.2 群体感应 | 第12-19页 |
1.2.1 细菌种内群体感应系统 | 第13-17页 |
1.2.1.1 革兰氏阴性菌的群体感应 | 第13-16页 |
1.2.1.2 革兰氏阳性菌群体感应调控系统 | 第16-17页 |
1.2.2 革兰氏阴性菌和革兰氏阳性菌的种间群体感应系统 | 第17-18页 |
1.2.3 其他群体感应系统 | 第18-19页 |
1.3 研究目的及意义 | 第19-20页 |
第二章 luxI、luxR基因与蜂房哈夫尼菌腐败特性的关系 | 第20-31页 |
2.1 材料与试剂 | 第20-23页 |
2.1.1 实验菌株及材料 | 第20页 |
2.1.2 主要培养基 | 第20-21页 |
2.1.3 实验试剂 | 第21-22页 |
2.1.4 实验仪器 | 第22-23页 |
2.2 实验方法 | 第23-25页 |
2.2.1 蜂房哈夫尼菌菌悬液的制备 | 第23页 |
2.2.2 无菌水发海参块的制备 | 第23页 |
2.2.3 接种与贮藏实验 | 第23页 |
2.2.4 海参感官评定 | 第23-24页 |
2.2.5 海参中微生物计数 | 第24页 |
2.2.6 海参挥发性盐基氮测定 | 第24页 |
2.2.7 海参质构测定 | 第24-25页 |
2.3 结果与讨论 | 第25-30页 |
2.3.1 海参感官变化 | 第25页 |
2.3.2 海参中微生物的变化 | 第25-26页 |
2.3.3 海参挥发性盐基氮的变化 | 第26-27页 |
2.3.4 海参质构的变化 | 第27-30页 |
2.3.4.1 海参硬度的变化 | 第27-28页 |
2.3.4.2 海参弹性的变化 | 第28-29页 |
2.3.4.3 海参内聚性的变化 | 第29页 |
2.3.4.4 海参咀嚼性的变化 | 第29-30页 |
2.4 本章小结 | 第30-31页 |
第三章 luxI、luxR基因对蜂房哈夫尼菌生物学特性的影响 | 第31-39页 |
3.1 材料与试剂 | 第31页 |
3.1.1 实验材料 | 第31页 |
3.1.2 实验试剂与仪器 | 第31页 |
3.2 实验方法 | 第31-33页 |
3.2.1 细菌生长曲线的测定 | 第31页 |
3.2.2 细菌信号分子产量的测定 | 第31-32页 |
3.2.2.1 AHLs粗提液的制备 | 第32页 |
3.2.2.2 高效液相色谱(HPLC)检测AHLs含量 | 第32页 |
3.2.3 细菌泳动能力的测定 | 第32页 |
3.2.4 生物膜的制备和测定 | 第32-33页 |
3.3 结果与讨论 | 第33-38页 |
3.3.1 luxI、luxR基因对蜂房哈夫尼菌生长的影响 | 第33页 |
3.3.2 luxI、luxR基因对蜂房哈夫尼菌信号分子含量的影响 | 第33-37页 |
3.3.3 luxI、luxR基因对蜂房哈夫尼菌泳动性的影响 | 第37页 |
3.3.4 luxI、luxR基因对蜂房哈夫尼菌生物膜形成能力的影响 | 第37-38页 |
3.4 本章小结 | 第38-39页 |
第四章 C_6-HSL对蜂房哈夫尼菌生物学特性的影响 | 第39-49页 |
4.1 材料与实际 | 第39页 |
4.1.1 实验菌株 | 第39页 |
4.1.2 实验试剂与仪器 | 第39页 |
4.2 实验方法 | 第39-40页 |
4.2.1 细菌生长曲线的测定 | 第39页 |
4.2.2 菌体泳动能力的测定 | 第39-40页 |
4.2.3 菌体生物膜的制备和测定 | 第40页 |
4.3 结果与讨论 | 第40-48页 |
4.3.1 C_6-HSL对蜂房哈夫尼菌生长的影响 | 第40-43页 |
4.3.2 C_6-HSL对蜂房哈夫尼菌泳动性的影响 | 第43-45页 |
4.3.3 C_6-HSL对蜂房哈夫尼菌生物膜的影响 | 第45-48页 |
4.4 本章小结 | 第48-49页 |
第五章 结论 | 第49-50页 |
参考文献 | 第50-56页 |
致谢 | 第56-57页 |
附录 | 第57页 |