| 摘要 | 第6-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第17-31页 |
| 1.1 益生菌和益生性能 | 第17-19页 |
| 1.1.1 乳酸菌简介 | 第17页 |
| 1.1.2 益生菌的研究进展 | 第17-18页 |
| 1.1.3 酿酒微生物的益生性能 | 第18页 |
| 1.1.4 抗氧化能力 | 第18-19页 |
| 1.2 葡萄酒苹果酸-乳酸发酵 | 第19-21页 |
| 1.2.1 苹果酸-乳酸发酵 | 第19页 |
| 1.2.2 影响苹果酸-乳酸发酵的因素 | 第19页 |
| 1.2.3 苹果酸-乳酸发酵对葡萄酒化学物质的影响 | 第19-20页 |
| 1.2.4 苹果酸-乳酸发酵对葡萄酒颜色的影响 | 第20-21页 |
| 1.3 谷胱甘肽与葡萄酒酿造 | 第21-26页 |
| 1.3.1 谷胱甘肽简介 | 第21-22页 |
| 1.3.2 谷胱甘肽的测定方法 | 第22页 |
| 1.3.3 谷胱甘肽对葡萄酒品质的影响 | 第22-24页 |
| 1.3.4 影响葡萄酒中GSH含量的因素 | 第24-26页 |
| 1.3.5 葡萄酒酿造过程中添加谷胱甘肽 | 第26页 |
| 1.4 酒酒球菌相关基因研究进展 | 第26-28页 |
| 1.5 国内酒酒球菌研究进展 | 第28-29页 |
| 1.6 研究意义与内容 | 第29-31页 |
| 1.6.1 研究意义 | 第29页 |
| 1.6.2 研究内容 | 第29-30页 |
| 1.6.3 技术路线 | 第30-31页 |
| 第二章 高抗氧化活性酒酒球菌的筛选及其特性研究 | 第31-51页 |
| 2.1 引言 | 第31-32页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第32-33页 |
| 2.2.1 菌株 | 第32页 |
| 2.2.2 培养基与培养条件 | 第32页 |
| 2.2.3 试剂 | 第32页 |
| 2.2.4 仪器与设备 | 第32-33页 |
| 2.3 试验方法 | 第33-36页 |
| 2.3.1 完整细胞和无细胞提取物的制备 | 第33页 |
| 2.3.2 DPPH法 | 第33页 |
| 2.3.3 还原活性的测定 | 第33页 |
| 2.3.4 超氧阴离子和羟自由基清除能力的测定 | 第33页 |
| 2.3.5 FRAP能力的测定 | 第33-34页 |
| 2.3.6 抑制抗坏血酸自氧化能力的测定 | 第34页 |
| 2.3.7 抑制脂质过氧化的测定 | 第34页 |
| 2.3.8 螯合亚铁离子能力的测定 | 第34-35页 |
| 2.3.9 谷胱甘肽还原酶和谷胱甘肽过氧化物酶的测定 | 第35页 |
| 2.3.10 细胞内谷胱甘肽浓度的测定 | 第35页 |
| 2.3.11 模拟胃液耐受性的测定 | 第35页 |
| 2.3.12 模拟肠液耐受性的测定 | 第35页 |
| 2.3.13 胆盐耐受性的测定 | 第35-36页 |
| 2.3.14 细胞表面疏水性的测定 | 第36页 |
| 2.3.15 统计分析 | 第36页 |
| 2.4 结果与分析 | 第36-47页 |
| 2.4.1 DPPH·清除能力 | 第36页 |
| 2.4.2 还原能力 | 第36-37页 |
| 2.4.3 超氧阴离子清除能力 | 第37页 |
| 2.4.4 羟自由基清除能力 | 第37页 |
| 2.4.5 FRAP能力 | 第37页 |
| 2.4.6 抑制抗坏血酸自氧化的能力 | 第37页 |
| 2.4.7 抑制亚油酸过氧化的能力 | 第37-38页 |
| 2.4.8 亚铁离子螯合能力 | 第38-40页 |
| 2.4.9 谷胱甘肽还原酶和谷胱甘肽过氧化物酶 | 第40-41页 |
| 2.4.10 谷胱甘肽 | 第41-42页 |
| 2.4.11 主成分分析 | 第42-43页 |
| 2.4.12 模拟胃肠液耐受性 | 第43-45页 |
| 2.4.13 胆盐耐受性 | 第45页 |
| 2.4.14 细胞表面疏水特性 | 第45-47页 |
| 2.5 讨论 | 第47-50页 |
| 2.5.1 酒酒球菌的抗氧化性能 | 第47-48页 |
| 2.5.2 酒酒球菌的体外模拟胃肠道耐受性 | 第48-49页 |
| 2.5.3 酒酒球菌的胆盐耐受性 | 第49页 |
| 2.5.4 酒酒球菌的表面疏水特性 | 第49-50页 |
| 2.6 小结 | 第50-51页 |
| 第三章 抗氧化性能不同的酒酒球菌对品丽珠葡萄酒品质的影响 | 第51-75页 |
| 3.1 引言 | 第51页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第51-52页 |
| 3.2.1 菌株 | 第51页 |
| 3.2.2 培养基与培养条件 | 第51页 |
| 3.2.3 试剂 | 第51页 |
| 3.2.4 仪器与设备 | 第51-52页 |
| 3.3 试验方法 | 第52-56页 |
| 3.3.1 葡萄酒酿造 | 第52页 |
| 3.3.2 基本理化指标的测定 | 第52页 |
| 3.3.3 总酚含量的测定 | 第52-53页 |
| 3.3.4 总类黄酮含量的测定 | 第53页 |
| 3.3.5 黄烷醇含量的测定 | 第53页 |
| 3.3.6 原花青素含量的测定 | 第53页 |
| 3.3.7 总花色苷含量的测定 | 第53-54页 |
| 3.3.8 高效液相色谱法测定单体酚 | 第54页 |
| 3.3.9 抗氧化活性的测定 | 第54-55页 |
| 3.3.10 颜色评价 | 第55-56页 |
| 3.3.11 统计分析 | 第56页 |
| 3.4 结果与分析 | 第56-68页 |
| 3.4.1 基本理化指标 | 第56页 |
| 3.4.2 葡萄酒化学物质 | 第56-57页 |
| 3.4.3 葡萄酒中的单体酚 | 第57-60页 |
| 3.4.4 葡萄酒的抗氧化能力 | 第60-61页 |
| 3.4.5 葡萄酒的色泽 | 第61-64页 |
| 3.4.6 主成分分析 | 第64-67页 |
| 3.4.7 测定指标之间的相关性 | 第67-68页 |
| 3.5 讨论 | 第68-74页 |
| 3.5.1 葡萄酒化学物质 | 第68-71页 |
| 3.5.2 葡萄酒抗氧化能力 | 第71-73页 |
| 3.5.3 葡萄酒的色泽 | 第73-74页 |
| 3.6 小结 | 第74-75页 |
| 第四章 还原型谷胱甘肽对品丽珠葡萄酒品质的影响 | 第75-101页 |
| 4.1 引言 | 第75页 |
| 4.2 材料与仪器 | 第75-76页 |
| 4.2.1 菌株 | 第75页 |
| 4.2.2 培养基与培养条件 | 第75页 |
| 4.2.3 试剂 | 第75页 |
| 4.2.4 仪器与设备 | 第75-76页 |
| 4.3 试验方法 | 第76-77页 |
| 4.3.1 葡萄酒酿造 | 第76页 |
| 4.3.2 葡萄酒化学物质及抗氧化活性测定 | 第76页 |
| 4.3.3 葡萄酒中香气物质的测定及分析 | 第76-77页 |
| 4.3.4 统计分析 | 第77页 |
| 4.4 结果与分析 | 第77-95页 |
| 4.4.1 基本理化指标 | 第77页 |
| 4.4.2 葡萄酒化学物质 | 第77-78页 |
| 4.4.3 葡萄酒中的单体酚 | 第78-80页 |
| 4.4.4 葡萄酒的抗氧化能力 | 第80页 |
| 4.4.5 葡萄酒的色泽 | 第80-82页 |
| 4.4.6 葡萄酒及其测定指标的主成分分析 | 第82-84页 |
| 4.4.7 葡萄酒中的香气物质 | 第84-91页 |
| 4.4.8 葡萄酒中香气物质的主成分分析 | 第91-95页 |
| 4.5 讨论 | 第95-100页 |
| 4.5.1 葡萄酒化学物质 | 第95-96页 |
| 4.5.2 葡萄酒的抗氧化能力 | 第96页 |
| 4.5.3 葡萄酒的色泽 | 第96页 |
| 4.5.4 葡萄酒中的香气物质 | 第96-100页 |
| 4.6 小结 | 第100-101页 |
| 第五章 经预适应性培养的酒酒球菌SD-2a对品丽珠葡萄酒品质的影响 | 第101-121页 |
| 5.1 引言 | 第101页 |
| 5.2 材料与仪器 | 第101-102页 |
| 5.2.1 试验菌株 | 第101页 |
| 5.2.2 菌株培养及培养条件 | 第101-102页 |
| 5.2.3 试剂 | 第102页 |
| 5.2.4 仪器与设备 | 第102页 |
| 5.3 试验方法 | 第102-105页 |
| 5.3.1 生长曲线的绘制 | 第102页 |
| 5.3.2 引物设计 | 第102-104页 |
| 5.3.3 RNA提取及检测 | 第104-105页 |
| 5.3.4 反转录合成cDNA | 第105页 |
| 5.3.5 qRT-PCR反应 | 第105页 |
| 5.3.6 数据处理 | 第105页 |
| 5.3.7 葡萄酒酿造 | 第105页 |
| 5.3.8 统计分析 | 第105页 |
| 5.4 结果与分析 | 第105-117页 |
| 5.4.1 GSH对O. oeni SD-2a生长的影响 | 第105-108页 |
| 5.4.2 酒酒球菌在不同FMATB培养基中基因的表达 | 第108-110页 |
| 5.4.3 葡萄酒的基本理化指标 | 第110-111页 |
| 5.4.4 葡萄酒的化学物质 | 第111-112页 |
| 5.4.5 葡萄酒中的单体酚 | 第112-113页 |
| 5.4.6 葡萄酒的抗氧化能力 | 第113-114页 |
| 5.4.7 葡萄酒的颜色 | 第114-116页 |
| 5.4.8 主成分分析 | 第116-117页 |
| 5.5 讨论 | 第117-120页 |
| 5.5.1 GSH对O. oeni SD-2a生长的影响 | 第117页 |
| 5.5.2 不同培养环境中O. oeni SD-2a基因的表达情况 | 第117-119页 |
| 5.5.3 经酸适应性培养后的O. oeni SD-2a对葡萄酒品质的影响 | 第119-120页 |
| 5.6 小结 | 第120-121页 |
| 第六章 苹果酸-乳酸发酵过程中酒酒球菌不同基因的表达情况 | 第121-134页 |
| 6.1 引言 | 第121页 |
| 6.2 材料与仪器 | 第121-122页 |
| 6.2.1 试验菌株 | 第121页 |
| 6.2.2 苹果酸-乳酸发酵 | 第121-122页 |
| 6.2.3 试剂 | 第122页 |
| 6.2.4 仪器与设备 | 第122页 |
| 6.3 试验方法 | 第122-123页 |
| 6.3.1 菌体生长曲线的绘制 | 第122页 |
| 6.3.2 苹果酸测定 | 第122页 |
| 6.3.3 引物设计 | 第122页 |
| 6.3.4 RNA提取及检测 | 第122页 |
| 6.3.5 反转录合成cDNA | 第122-123页 |
| 6.3.6 qRT-PCR反应 | 第123页 |
| 6.3.7 数据处理 | 第123页 |
| 6.3.8 统计分析 | 第123页 |
| 6.4 结果与分析 | 第123-128页 |
| 6.4.1 O. oeni SD-2a在模拟葡萄酒中的生长情况 | 第123-124页 |
| 6.4.2 代谢相关酶基因的表达特征 | 第124-126页 |
| 6.4.3 胁迫应答相关基因的表达特征 | 第126-128页 |
| 6.5 讨论 | 第128-133页 |
| 6.5.1 代谢相关酶基因的表达特征 | 第128-129页 |
| 6.5.2 胁迫应答相关基因的表达特征 | 第129-133页 |
| 6.6 小结 | 第133-134页 |
| 第七章 结论、创新点与展望 | 第134-136页 |
| 7.1 结论 | 第134-135页 |
| 7.2 创新点 | 第135页 |
| 7.3 展望 | 第135-136页 |
| 参考文献 | 第136-154页 |
| 缩略词 | 第154-156页 |
| 致谢 | 第156-157页 |
| 作者简介 | 第157页 |
