| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-38页 |
| 1.1 凡纳滨对虾概述 | 第14页 |
| 1.2 水产品腐败变质和保鲜技术研究进展 | 第14-16页 |
| 1.3 细菌的群体感应(quorum sensing.QS)现象 | 第16-25页 |
| 1.3.1 N-酰基高丝氨酸内酯(N-acyl homoserine lactone,AHLs)介导的QS系统 | 第16-20页 |
| 1.3.2 寡肽介导的QS系统 | 第20-22页 |
| 1.3.3 Al-2介导的QS系统 | 第22-24页 |
| 1.3.4 Al-3介导的QS系统 | 第24-25页 |
| 1.3.5 其它类型的Als | 第25页 |
| 1.4 QS的检测方法 | 第25-28页 |
| 1.4.1 生物法 | 第25-27页 |
| 1.4.2 仪器法 | 第27-28页 |
| 1.5 QS对食品腐败和安全的影响 | 第28-34页 |
| 1.5.1 食品源细菌QS的研究进展 | 第28-29页 |
| 1.5.2 食品源腐败菌的QS | 第29-31页 |
| 1.5.3 食品源致病菌的QS | 第31-34页 |
| 1.6 QS抑制剂(QS inhibitor,QSI) | 第34-35页 |
| 1.6.1 QSI的研究现状及问题 | 第34-35页 |
| 1.6.2 QSI对食品源细菌致病致腐的影响 | 第35页 |
| 1.7 本论文的立题依据和主要内容 | 第35-38页 |
| 1.7.1 本论文的背景、目的和意义 | 第35-36页 |
| 1.7.2 本论文的主要研究内容 | 第36-38页 |
| 第二章 冷藏凡纳滨对虾中的Als与腐败进程 | 第38-50页 |
| 引言 | 第38页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第38-39页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第38-39页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第39页 |
| 2.2 实验方法 | 第39-42页 |
| 2.2.1 虾肉中Als的提取 | 第39-40页 |
| 2.2.2 Als的检测 | 第40-41页 |
| 2.2.3 虾肉生化指标的测定 | 第41-42页 |
| 2.2.4 数据统计分析 | 第42页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第42-49页 |
| 2.3.1 冷藏凡纳滨对虾中AHLs的动态变化 | 第42-44页 |
| 2.3.2 冷藏凡纳滨对虾中AI-2活性的动态变化 | 第44页 |
| 2.3.3 冷藏凡纳滨对虾中DKPs的动态变化 | 第44-45页 |
| 2.3.4 外源Als对冷藏凡纳滨对虾腐败进程的影响 | 第45-49页 |
| 本章小结 | 第49-50页 |
| 第三章 冷藏凡纳滨对虾的SSO | 第50-60页 |
| 引言 | 第50页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第50-51页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第50页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第50-51页 |
| 3.2 实验方法 | 第51-52页 |
| 3.2.1 菌相鉴定 | 第51页 |
| 3.2.2 无菌虾仁的制备及反接种 | 第51-52页 |
| 3.2.3 虾肉生化指标的测定 | 第52页 |
| 3.2.4 数据统计分析 | 第52页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第52-59页 |
| 3.3.1 冷藏凡纳滨对虾的菌相变化 | 第53页 |
| 3.3.2 反接种凡纳滨对虾冷藏过程中微生物的生长动力学 | 第53-55页 |
| 3.3.3 反接种凡纳滨对虾冷藏过程中TVB-N含量的变化 | 第55-56页 |
| 3.3.4 主要腐败菌致腐能力的定量分析 | 第56页 |
| 3.3.5 外源Als对SSO生长的影响 | 第56-59页 |
| 本章小结 | 第59-60页 |
| 第四章 冷藏凡纳滨对虾SSO的QS系统 | 第60-75页 |
| 引言 | 第60页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第60-61页 |
| 4.1.1 菌株与培养基 | 第60-61页 |
| 4.1.2 实验仪器 | 第61页 |
| 4.2 实验方法 | 第61-65页 |
| 4.2.1 Als的检测 | 第62页 |
| 4.2.2 luxR和luxS基因的扩增 | 第62-63页 |
| 4.2.3 luxR基因表达水平的测定 | 第63-64页 |
| 4.2.4 生物膜的测定 | 第64-65页 |
| 4.2.5 胞外蛋白酶活力的测定 | 第65页 |
| 4.2.6 数据统计分析 | 第65页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第65-74页 |
| 4.3.1 SSO的Als活性 | 第66-69页 |
| 4.3.2 SSO对Als的感受 | 第69-72页 |
| 4.3.3 Als对SSO生物膜形成和胞外蛋白酶活力的调控 | 第72-74页 |
| 本章小结 | 第74-75页 |
| 第五章 冷藏凡纳滨对虾中QS窃听现象的初步研究 | 第75-92页 |
| 引言 | 第75页 |
| 5.1 材料与仪器 | 第75-76页 |
| 5.1.1 菌株与培养基 | 第75-76页 |
| 5.1.2 实验仪器 | 第76页 |
| 5.2 实验方法 | 第76-79页 |
| 5.2.1 AHLs活性的检测 | 第76-77页 |
| 5.2.2 QS窃听行为的检测 | 第77页 |
| 5.2.3 luxR基因表达水平的测定 | 第77页 |
| 5.2.4 细菌生长繁殖的测定 | 第77页 |
| 5.2.5 胞外蛋白酶活力的测定 | 第77-78页 |
| 5.2.6 生物膜的测定 | 第78页 |
| 5.2.7 致腐能力的测定 | 第78-79页 |
| 5.2.8 数据统计分析 | 第79页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第79-91页 |
| 5.3.1 SA02窃听ACl分泌的AHLs | 第79-82页 |
| 5.3.2 QS窃听对SA02和ACl在营养胁迫环境下生长繁殖的影响 | 第82-83页 |
| 5.3.3 QS窃听对SA02和ACl胞外蛋白酶分泌的影响 | 第83-84页 |
| 5.3.4 QS窃听对SA02和ACl生物膜形成的影响 | 第84-86页 |
| 5.3.5 QS窃听对SA02和ACl在体内生的影响 | 第86-88页 |
| 5.3.6 QS窃听对SA02和ACl在体内产生致腐因子的影响 | 第88-91页 |
| 本章小结 | 第91-92页 |
| 第六章 肉桂醛对冷藏凡纳滨对虾主要腐败菌QS和致腐能力的调控 | 第92-101页 |
| 引言 | 第92页 |
| 6.1 材料与仪器 | 第92-93页 |
| 6.1.1 材料与试剂 | 第92-93页 |
| 6.1.2 实验仪器 | 第93页 |
| 6.2 实验方法 | 第93-95页 |
| 6.2.1 最小抑菌浓度的测定 | 第93-94页 |
| 6.2.2 菌株的处理和活性的检测 | 第94页 |
| 6.2.3 凡纳滨对虾的处理及Als活性的测定 | 第94页 |
| 6.2.4 致腐能力的测定 | 第94-95页 |
| 6.2.5 数据统计分析 | 第95页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第95-100页 |
| 6.3.1 肉桂醛的最小抑菌浓度 | 第95页 |
| 6.3.2 肉桂醛对AC/的AHLs活性的影响 | 第95-96页 |
| 6.3.3 肉桂醛对冷藏凡纳滨对虾中AHLs和Al-2活性的影响 | 第96-97页 |
| 6.3.4 肉桂醛对SA02和ACl混合菌致腐能力的影响 | 第97-100页 |
| 本章小结 | 第100-101页 |
| 第七章 结论 | 第101-103页 |
| 7.1 全文总结 | 第101-102页 |
| 7.2 文章创新点 | 第102页 |
| 7.3 展望 | 第102-103页 |
| 参考文献 | 第103-120页 |
| 致谢 | 第120页 |
| 个人简历 | 第120页 |
| 研究成果 | 第120-121页 |
