| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 目录 | 第9-13页 |
| 第一章 绪论 | 第13-27页 |
| 1.1 引言 | 第13-14页 |
| 1.2 抗氧化肽的研究进展 | 第14-17页 |
| 1.2.1 抗氧化肽的来源 | 第14-15页 |
| 1.2.1.1 生物体内天然抗氧化肽 | 第14页 |
| 1.2.1.2 植物蛋白来源抗氧化肽 | 第14-15页 |
| 1.2.1.3 动物蛋白来源抗氧化肽 | 第15页 |
| 1.2.2 抗氧化肽的制备方法 | 第15-17页 |
| 1.2.2.1 提取法 | 第16页 |
| 1.2.2.2 合成法 | 第16页 |
| 1.2.2.3 酶解法 | 第16-17页 |
| 1.3 抗氧化肽的评价方法 | 第17-20页 |
| 1.3.1 清除自由基的能力 | 第17-19页 |
| 1.3.1.1 DPPH自由基清除率的测定 | 第17-18页 |
| 1.3.1.2 羟基自由基清除率的测定 | 第18页 |
| 1.3.1.3 超氧阴离子自由基清除率的测定 | 第18-19页 |
| 1.3.2 抑制脂质过氧化的能力 | 第19页 |
| 1.3.3 螯合金属离子的能力 | 第19页 |
| 1.3.4 协同抗氧化能力 | 第19-20页 |
| 1.4 影响抗氧化能力的因素 | 第20-22页 |
| 1.4.1 蛋白酶 | 第20页 |
| 1.4.2 底物蛋白 | 第20-21页 |
| 1.4.3 pH值 | 第21页 |
| 1.4.4 温度 | 第21页 |
| 1.4.5 水解度 | 第21-22页 |
| 1.5 抗氧化肽的分离纯化 | 第22-24页 |
| 1.5.1 超滤法 | 第22-23页 |
| 1.5.2 离子交换层析 | 第23页 |
| 1.5.3 凝胶层析 | 第23-24页 |
| 1.5.4 反相高效液相色谱(RP-HPLC) | 第24页 |
| 1.6 带鱼及其营养价值 | 第24页 |
| 1.7 本课题的研究背景及研究意义 | 第24-25页 |
| 1.8 本课题的研究内容 | 第25-27页 |
| 第二章 带鱼蛋白酶解物清除DPPH自由基能力的研究 | 第27-37页 |
| 2.1 引言 | 第27页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第27-28页 |
| 2.2.1 主要材料 | 第27-28页 |
| 2.2.2 主要仪器 | 第28页 |
| 2.3 实验方法 | 第28-29页 |
| 2.3.1 带鱼蛋白酶解液的制备 | 第28页 |
| 2.3.2 酶种类的选择 | 第28-29页 |
| 2.3.3 蛋白质水解度的测定 | 第29页 |
| 2.3.4 酶解物DPPH自由基清除能力的测定 | 第29页 |
| 2.3.5 响应面分析因素及水平表 | 第29页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第29-36页 |
| 2.4.1 酶种类的选择 | 第29-30页 |
| 2.4.2 酶解时间对DPPH自由基清除率、水解度的影响 | 第30-31页 |
| 2.4.3 酶解温度对DPPH自由基清除率、水解度的影响 | 第31-32页 |
| 2.4.4 加酶量对DPPH自由基清除率、水解度的影响 | 第32-33页 |
| 2.4.5 响应面优化结果及分析 | 第33-36页 |
| 2.5 结论 | 第36-37页 |
| 第三章 带鱼蛋白酶解物还原力和·OH自由基清除能力的研究 | 第37-45页 |
| 3.1 引言 | 第37页 |
| 3.2 材料与方法 | 第37-38页 |
| 3.2.1 主要材料 | 第37页 |
| 3.2.2 主要仪器 | 第37-38页 |
| 3.3 实验方法 | 第38-39页 |
| 3.3.1 带鱼蛋白酶解液的制备 | 第38页 |
| 3.3.2 还原力的测定 | 第38页 |
| 3.3.3 酶解物羟基自由基清除能力的测定 | 第38页 |
| 3.3.4 正交试验因素水平表 | 第38-39页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第39-44页 |
| 3.4.1 加酶量对羟基自由基清除率、还原力的影响 | 第39-40页 |
| 3.4.2 温度对羟基自由基清除率、还原力的影响 | 第40页 |
| 3.4.3 酶解时间对羟基自由基清除率、还原力的影响 | 第40-41页 |
| 3.4.4 水料比对羟基自由基清除率、还原力的影响 | 第41-42页 |
| 3.4.5 正交实验 | 第42-44页 |
| 3.5 结论 | 第44-45页 |
| 第四章 带鱼蛋白酶解物清除ABTS~+和O_2~-·自由基能力的研究 | 第45-54页 |
| 4.1 引言 | 第45页 |
| 4.2 材料与方法 | 第45-46页 |
| 4.2.1 主要材料 | 第45-46页 |
| 4.2.2 主要仪器 | 第46页 |
| 4.3 实验方法 | 第46-47页 |
| 4.3.1 带鱼蛋白酶解液的制备 | 第46页 |
| 4.3.2 酶解液ABTS~+自由基清除能力的测定 | 第46页 |
| 4.3.3 酶解液O2-·自由基清除能力的测定 | 第46页 |
| 4.3.4 正交试验因素水平表 | 第46-47页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第47-52页 |
| 4.4.1 酶解时间对ABTS~+自由基、O_2~-·自由基清除率的影响 | 第47-48页 |
| 4.4.2 加酶量对ABTS~+自由基、O_2~-·自由基清除率的影响 | 第48-49页 |
| 4.4.3 酶解温度对ABTS~+自由基、O_2~-·自由基清除率的影响 | 第49-51页 |
| 4.4.4 正交实验 | 第51-52页 |
| 4.5 结论 | 第52-54页 |
| 第五章 Alcalase酶解带鱼蛋白动力学模型研究 | 第54-61页 |
| 5.1 引言 | 第54-55页 |
| 5.2 材料与仪器 | 第55页 |
| 5.2.1 主要材料 | 第55页 |
| 5.2.2 主要仪器 | 第55页 |
| 5.3 实验方法 | 第55页 |
| 5.3.1 带鱼蛋白酶解液的制备 | 第55页 |
| 5.3.2 蛋白质水解度的测定 | 第55页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第55-60页 |
| 5.4.1 带鱼蛋白水解动力学模型 | 第55-56页 |
| 5.4.2 初始蛋白浓度对水解度的影响 | 第56页 |
| 5.4.3 初始酶用量对水解度的影响 | 第56-57页 |
| 5.4.4 动力学参数确定及动力学模型 | 第57-58页 |
| 5.4.5 Alcalase酶失活常数的确定 | 第58-59页 |
| 5.4.6 酶解动力学模型验证 | 第59-60页 |
| 5.5 结论 | 第60-61页 |
| 第六章 带鱼蛋白抗氧化肽的分离纯化研究 | 第61-76页 |
| 6.1 引言 | 第61页 |
| 6.2 材料与仪器 | 第61-62页 |
| 6.2.1 主要材料 | 第61-62页 |
| 6.2.2 主要仪器 | 第62页 |
| 6.3 实验方法 | 第62-64页 |
| 6.3.1 带鱼蛋白酶解液的制备 | 第62页 |
| 6.3.2 酶解物DPPH自由基清除能力的测定 | 第62页 |
| 6.3.3 多肽含量的测定 | 第62-63页 |
| 6.3.4 离心超滤分离抗氧化肽 | 第63页 |
| 6.3.5 离子交换层析分离抗氧化肽 | 第63-64页 |
| 6.3.6 凝胶层析分离抗氧化肽 | 第64页 |
| 6.3.7 RP-HPLC分离抗氧化肽 | 第64页 |
| 6.4 结果与讨论 | 第64-74页 |
| 6.4.1 离心超滤分离抗氧化肽 | 第64-65页 |
| 6.4.2 离子交换层析分离抗氧化肽 | 第65-70页 |
| 6.4.2.1 上样量和流速对分离效果的影响 | 第65-67页 |
| 6.4.2.2 初始平衡缓冲液浓度对分离效果的影响 | 第67-68页 |
| 6.4.2.3 洗脱剂浓度对分离效果的影响 | 第68-70页 |
| 6.4.3 凝胶层析分离抗氧化肽 | 第70-73页 |
| 6.4.4 RP-HPLC分离抗氧化肽 | 第73-74页 |
| 6.5 结论 | 第74-76页 |
| 第七章 结论与展望 | 第76-78页 |
| 7.1 结论 | 第76-77页 |
| 7.2 展望 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-87页 |
| 作者简介 | 第87页 |
