| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-10页 |
| 1 绪论 | 第10-19页 |
| ·抗菌肽的概述 | 第10-12页 |
| ·抗菌肽的分类 | 第10页 |
| ·抗菌肽的生物活性 | 第10-11页 |
| ·抗菌肽的制备 | 第11-12页 |
| ·抗菌肽的抗菌机制 | 第12页 |
| ·酪蛋白源抗菌肽 | 第12-15页 |
| ·酪蛋白源抗菌肽的研究现状 | 第12-13页 |
| ·酪蛋白源抗菌肽的分离纯化 | 第13-14页 |
| ·酪蛋白源抗菌肽的应用 | 第14-15页 |
| ·细胞膜色谱法研究概况 | 第15-16页 |
| ·立题背景及意义 | 第16页 |
| ·本实验主要内容 | 第16-19页 |
| 2 实验材料与方法 | 第19-28页 |
| ·材料与设备 | 第19页 |
| ·主要实验材料 | 第19页 |
| ·主要实验仪器 | 第19页 |
| ·实验方法 | 第19-28页 |
| ·不同时间酪蛋白酶解液水解度的测定 | 第19-20页 |
| ·酪蛋白源抗菌肽制备条件的确立 | 第20-21页 |
| ·酪蛋白酶解产物的制备 | 第21页 |
| ·酵母菌细胞膜（SCM）的制备 | 第21-22页 |
| ·酵母菌细胞膜固定相（SCMSP）的制备 | 第22-23页 |
| ·SCMSP 性质分析 | 第23-24页 |
| ·SCM 亲和萃取联合 HPLC 指纹图谱分离抗菌肽 | 第24-25页 |
| ·酪蛋白源抗菌肽氨基酸序列测定 | 第25页 |
| ·酪蛋白源抗菌肽最小抑菌浓度（MIC）的测定 | 第25-26页 |
| ·酪蛋白源抗菌肽的稳定性 | 第26页 |
| ·酪蛋白源抗菌肽对菌体生长曲线的影响 | 第26页 |
| ·pH 值对酪蛋白源抗菌肽表面疏水性影响 | 第26-27页 |
| ·抗菌肽对菌体内膜的影响 | 第27页 |
| ·抗菌肽对菌体壁膜组分的影响 | 第27-28页 |
| 3 结果与讨论 | 第28-53页 |
| ·酪蛋白总氮含量的测定 | 第28页 |
| ·不同时间酶解液 pH 值的变化 | 第28-29页 |
| ·酪蛋白源酶解肽制备条件的确立 | 第29-30页 |
| ·不同蛋白酶对酪蛋白的酶解能力 | 第30页 |
| ·酶的种类对制备酪蛋白源抗菌肽的影响 | 第30-31页 |
| ·水解酶的筛选 | 第31-32页 |
| ·水解条件的确定 | 第32-36页 |
| ·不同 pH 值酶解产物的抑菌活性 | 第32-33页 |
| ·不同底物浓度酶解产物的抑菌活性 | 第33页 |
| ·不同加酶量酶解产物的抑菌活性 | 第33-34页 |
| ·不同酶解时间酶解产物的抑菌活性 | 第34-35页 |
| ·正交实验结果 | 第35-36页 |
| ·反复冻融法对酵母细胞破壁率的影响 | 第36-38页 |
| ·加水量的影响 | 第36-37页 |
| ·冻融次数的影响 | 第37-38页 |
| ·超声场对酵母细胞破壁率的影响 | 第38-41页 |
| ·超声功率的影响 | 第38页 |
| ·超声总时间的影响 | 第38-39页 |
| ·每次超声时间的影响 | 第39-40页 |
| ·酵母菌体浓度的影响 | 第40-41页 |
| ·反复冻融及超声波协同作用对酵母细胞破壁率的影响 | 第41页 |
| ·酵母细胞形态结构的观察 | 第41-42页 |
| ·酵母细胞粒度分布 | 第42页 |
| ·SCM 吸附等温线 | 第42-43页 |
| ·SCMSP 的表面特征 | 第43-44页 |
| ·SCM 亲和萃取联合 HPLC 指纹图谱分离酪蛋白源抗菌肽 | 第44-45页 |
| ·活性峰 1 结构鉴定 | 第45-46页 |
| ·Cpep11 最小抑菌浓度（MIC）的测定 | 第46页 |
| ·Cpep11 稳定性 | 第46-49页 |
| ·热稳定性 | 第46-47页 |
| ·离子强度稳定性 | 第47-48页 |
| ·储藏稳定性 | 第48-49页 |
| ·Cpep11 对菌体生长曲线的影响 | 第49-50页 |
| ·pH 值对 Cpep11 表面疏水性的影响 | 第50页 |
| ·Cpep11 对菌体内膜的影响 | 第50-51页 |
| ·Cpep11 对菌体壁膜组分的影响 | 第51-53页 |
| 主要结论与展望 | 第53-55页 |
| 主要结论 | 第53-54页 |
| 展望 | 第54-55页 |
| 致谢 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-62页 |
| 附录：作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第62页 |