| 摘要 | 第3-4页 |
| abstract | 第4页 |
| 第一章 引言 | 第9-19页 |
| 1.1 甲壳素及其物理化学性质 | 第9页 |
| 1.1.1 甲壳素的介绍 | 第9页 |
| 1.1.2 甲壳素的物理化学性质 | 第9页 |
| 1.2 壳聚糖及其物理化学性质 | 第9-11页 |
| 1.2.1 壳聚糖的介绍 | 第9-10页 |
| 1.2.2 壳聚糖的物理化学性质 | 第10-11页 |
| 1.3 壳聚糖的制备 | 第11-14页 |
| 1.3.1 不同脱乙酰度壳聚糖的制备 | 第11页 |
| 1.3.2 低分子量壳聚糖的制备 | 第11-14页 |
| 1.4 壳聚糖的抑真菌性评价 | 第14页 |
| 1.5 壳聚糖的应用 | 第14-16页 |
| 1.6 国内外研究动态及发展现状 | 第16-17页 |
| 1.7 研究的目的和意义以及研究内容 | 第17-19页 |
| 第二章 超声波法降解壳聚糖 | 第19-25页 |
| 2.1 材料与设备 | 第19页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第19页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第19页 |
| 2.2 实验方法 | 第19-21页 |
| 2.2.1 超声辅助法 | 第19页 |
| 2.2.2 分析方法 | 第19-20页 |
| 2.2.3 实验设计 | 第20-21页 |
| 2.3 结果与分析 | 第21-24页 |
| 2.3.1 盐酸质量分数对壳聚糖降解的影响 | 第21-22页 |
| 2.3.2 超声波时间对壳聚糖降解的影响 | 第22页 |
| 2.3.3 超声波频率对壳聚糖降解的影响 | 第22-23页 |
| 2.3.4 超声波反应温度对壳聚糖降解的影响 | 第23页 |
| 2.3.5 超声波降解壳聚糖优化正交实验结果分析 | 第23-24页 |
| 2.4 小结与讨论 | 第24-25页 |
| 第三章 壳聚糖及其降解产物对真菌的抑制研究 | 第25-33页 |
| 3.1 材料与设备 | 第25-26页 |
| 3.1.1 主要试剂 | 第25页 |
| 3.1.2 主要仪器 | 第25页 |
| 3.1.3 供试菌种 | 第25-26页 |
| 3.2 实验方法 | 第26-27页 |
| 3.2.1 培养基的制备 | 第26页 |
| 3.2.2 菌种的活化及菌悬液的制备 | 第26页 |
| 3.2.3 抑菌效率的测定 | 第26-27页 |
| 3.3 结果与分析 | 第27-32页 |
| 3.3.1 分子量对抑菌效果的影响（平板菌落记数法） | 第27页 |
| 3.3.2 不同浓度对其抑菌效果的影响（平板菌落记数法） | 第27-28页 |
| 3.3.3 pH值对抑菌效果的影响 | 第28页 |
| 3.3.4 最低抑菌浓度（MIC） | 第28-29页 |
| 3.3.5 培养时间对抑菌性能的影响 | 第29-30页 |
| 3.3.6 壳聚糖对真菌中黑曲霉菌的抑菌机理探讨 | 第30-32页 |
| 3.4 小结与讨论 | 第32-33页 |
| 第四章 壳聚糖膜的研究 | 第33-44页 |
| 4.1 材料与设备 | 第33页 |
| 4.2 实验方法 | 第33-35页 |
| 4.3 可食性膜制备工艺研究 | 第35-36页 |
| 4.4 结果与分析 | 第36-43页 |
| 4.4.1 可食性膜制备工艺结果分析 | 第36-41页 |
| 4.4.2 可食性复合膜的SEM扫描电镜分析 | 第41-42页 |
| 4.4.3 可食性复合膜的红外光谱分析 | 第42-43页 |
| 4.4.4 可食性复合膜的X-衍射分析 | 第43页 |
| 4.5 小结与讨论 | 第43-44页 |
| 第五章 结论与展望 | 第44-45页 |
| 5.1 结论 | 第44页 |
| 5.2 创新点 | 第44页 |
| 5.3 展望与建议 | 第44-45页 |
| 参考文献 | 第45-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 作者简介 | 第49页 |