| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第1章 绪论 | 第11-23页 |
| 1.1 研究背景与意义 | 第11-12页 |
| 1.2 国内外研究进展 | 第12-18页 |
| 1.2.1 壳寡糖的理化性质 | 第12-13页 |
| 1.2.2 壳寡糖的生物活性 | 第13-16页 |
| 1.2.3 壳寡糖分析检测方法 | 第16-18页 |
| 1.3 壳寡糖在体内的吸收代谢 | 第18-21页 |
| 1.3.1 寡糖胃肠道吸收的实验研究方法 | 第18-20页 |
| 1.3.2 GLUT2及SGLTs转运蛋白概述 | 第20-21页 |
| 1.3.3 壳寡糖体内外吸收机制研究进展 | 第21页 |
| 1.4 课题主要研究内容及技术路线 | 第21-23页 |
| 1.4.1 研究目的 | 第21-22页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第22页 |
| 1.4.3 技术路线 | 第22-23页 |
| 第2章 基于翻转肠囊模型的不同聚合度壳寡糖单体吸收机制研究 | 第23-36页 |
| 2.1 引言 | 第23页 |
| 2.2 材料与方法 | 第23-27页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第23-24页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第24-25页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第25-27页 |
| 2.2.4 数据处理 | 第27页 |
| 2.2.5 数据统计分析 | 第27页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第27-35页 |
| 2.3.1 翻转肠囊模型搭建及验证 | 第27-28页 |
| 2.3.2 壳寡糖原料筛选及组分分析 | 第28-29页 |
| 2.3.3 壳寡糖孵育浓度及孵育时间筛选 | 第29-31页 |
| 2.3.4 不同聚合度壳寡糖单体在大鼠小肠内的吸收情况 | 第31-32页 |
| 2.3.5 浓度及孵育时间对壳寡糖单体在大鼠小肠内的吸收影响 | 第32-33页 |
| 2.3.6 抑制剂对壳寡糖在大鼠小肠内的吸收影响 | 第33-35页 |
| 2.4 本章小结 | 第35-36页 |
| 第3章 基于Caco-2细胞模型的壳寡糖单体的转运机制探究 | 第36-48页 |
| 3.1 引言 | 第36页 |
| 3.2 材料与方法 | 第36-41页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第36-37页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第37-38页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第38-40页 |
| 3.2.4 数据处理 | 第40-41页 |
| 3.2.5 数据统计分析 | 第41页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第41-47页 |
| 3.3.1 Transwell建模 | 第41-43页 |
| 3.3.2 荧光标记壳寡糖产物的分析鉴定 | 第43-44页 |
| 3.3.3 壳寡糖孵育浓度的筛选 | 第44页 |
| 3.3.4 浓度及孵育时间对壳寡糖在Caco-2细胞上的吸收影响 | 第44-45页 |
| 3.3.5 抑制剂对壳寡糖在Caco-2细胞上的吸收影响 | 第45-47页 |
| 3.4 本章小结 | 第47-48页 |
| 第4章 壳二糖及壳五糖在Caco-2细胞中的亚定位 | 第48-55页 |
| 4.1 引言 | 第48页 |
| 4.2 材料与方法 | 第48-50页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第48-49页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第49页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第49-50页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第50-54页 |
| 4.3.1 浓度对壳二糖和壳五糖在细胞内定位的影响 | 第50-51页 |
| 4.3.2 时间对壳二糖和壳五糖在细胞内定位的影响 | 第51-52页 |
| 4.3.3 壳二糖和壳五糖在细胞器器内的亚定位 | 第52-54页 |
| 4.4 本章小结 | 第54-55页 |
| 第5章 结论与展望 | 第55-58页 |
| 5.1 结论 | 第55-56页 |
| 5.2 创新点 | 第56-57页 |
| 5.3 展望 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-69页 |
| 致谢 | 第69-70页 |
| 论文发表 | 第70页 |
