| 摘要 | 第3-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第11-16页 |
| 1.1 高脂饮食与代谢综合症 | 第11页 |
| 1.2 肠道菌群与健康的关系 | 第11-13页 |
| 1.2.1 肠道菌群概述 | 第11-12页 |
| 1.2.2 肠道菌群与免疫代谢的关系 | 第12-13页 |
| 1.3 多糖对肠道菌群影响的研究 | 第13-14页 |
| 1.3.1 多糖对代谢综合症的影响 | 第13-14页 |
| 1.3.2 多糖对肠道菌群的调节作用 | 第14页 |
| 1.4 本论文的研究内容及意义 | 第14-16页 |
| 1.4.1 研究意义 | 第14-15页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第15-16页 |
| 第二章 鲍鱼硫酸多糖的体内吸收及代谢研究 | 第16-27页 |
| 2.1 引言 | 第16页 |
| 2.2 实验材料 | 第16-18页 |
| 2.2.1 实验原料及实验动物 | 第16页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第16-17页 |
| 2.2.3 实验试剂 | 第17-18页 |
| 2.3 实验方法 | 第18-21页 |
| 2.3.1 AGSP的制备与纯化 | 第18-19页 |
| 2.3.1.1 D204大孔吸附树脂处理 | 第18页 |
| 2.3.1.2 AGSP的制备 | 第18-19页 |
| 2.3.2 HPLC-MS~n检测AGSP方法的建立 | 第19页 |
| 2.3.3 动物实验 | 第19页 |
| 2.3.4 机体消化系统对AGSP结构的影响 | 第19-20页 |
| 2.3.4.1 唾液消化模型 | 第19-20页 |
| 2.3.4.2 胃液消化模型 | 第20页 |
| 2.3.4.3 胃肠液消化模型 | 第20页 |
| 2.3.5 AGSP的体外发酵模型 | 第20页 |
| 2.3.6 短链脂肪酸(SCFAs)的测定 | 第20页 |
| 2.3.7 薄层色谱分析(TLC) | 第20-21页 |
| 2.3.8 数据统计分析 | 第21页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第21-26页 |
| 2.4.1 HPLC-MS~n检测方法的建立 | 第21-22页 |
| 2.4.2 AGSP体内吸收特性的研究 | 第22页 |
| 2.4.3 机体消化液对AGSP的影响 | 第22-23页 |
| 2.4.4 AGSP对人体肠道菌群的影响 | 第23-24页 |
| 2.4.5 AGSP促进了菌群代谢物短链脂肪酸的表达 | 第24-25页 |
| 2.4.6 AGSP的利用分析 | 第25页 |
| 2.4.7 AGSP衍生的低聚糖的吸收特性 | 第25-26页 |
| 2.5 本章小结 | 第26-27页 |
| 第三章 鲍鱼硫酸多糖对高脂膳食诱发的代谢综合症的抑制作用及其机制研究 | 第27-44页 |
| 3.1 引言 | 第27页 |
| 3.2 实验材料 | 第27-29页 |
| 3.2.1 实验原料及实验动物 | 第27页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第27-28页 |
| 3.2.3 实验试剂 | 第28-29页 |
| 3.3 实验方法 | 第29-33页 |
| 3.3.0 AGSP的制备与纯化 | 第29页 |
| 3.3.1 动物实验 | 第29页 |
| 3.3.2 理化指标的测定 | 第29页 |
| 3.3.3 H&E染色 | 第29-30页 |
| 3.3.4 小鼠体成分分析 | 第30页 |
| 3.3.5 粪便DNA的提取及高通量测序 | 第30页 |
| 3.3.6 SCFA的测定 | 第30-31页 |
| 3.3.7 RT-PCR | 第31-33页 |
| 3.3.8 多糖及脂质利用率的测定 | 第33页 |
| 3.3.9 统计学分析 | 第33页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第33-43页 |
| 3.4.1 AGSP抑制由高脂饮食诱发的肥胖症状 | 第33-34页 |
| 3.4.2 AGSP对高脂小鼠器官的改善作用 | 第34-35页 |
| 3.4.3 AGSP对高脂小鼠脂质代谢的影响 | 第35-37页 |
| 3.4.4 AGSP改善了高脂饮食导致的肠道菌群失调 | 第37-40页 |
| 3.4.5 AGSP对高脂小鼠多糖利用的影响 | 第40-41页 |
| 3.4.6 AGSP对SCFAs的影响 | 第41-42页 |
| 3.4.7 AGSP对脂质相关基因表达的影响 | 第42-43页 |
| 3.5 本章小结 | 第43-44页 |
| 第四章 饮食方式对鲍鱼硫酸多糖抑制代谢综合症作用的影响 | 第44-57页 |
| 4.1 引言 | 第44页 |
| 4.2 实验材料 | 第44页 |
| 4.2.1 实验原料及实验动物 | 第44页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第44页 |
| 4.2.3 实验试剂 | 第44页 |
| 4.3 实验方法 | 第44-46页 |
| 4.3.1 AGSP的制备与纯化 | 第44-45页 |
| 4.3.2 动物实验 | 第45页 |
| 4.3.3 小鼠体成分分析 | 第45页 |
| 4.3.4 理化指标测定 | 第45页 |
| 4.3.5 HE染色 | 第45页 |
| 4.3.6 DNA提取和高通量测序 | 第45页 |
| 4.3.7 RT-PCR | 第45-46页 |
| 4.3.8 SCFAs的测定 | 第46页 |
| 4.3.9 多糖及脂质利用率的测定 | 第46页 |
| 4.3.10 统计学分析 | 第46页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第46-56页 |
| 4.4.1 饮食方式对AGSP抑制肥胖活性的影响 | 第46-48页 |
| 4.4.2 饮食方式对AGSP小鼠脂质代谢调节能力的影响 | 第48-49页 |
| 4.4.3 饮食方式对AGSP肠道菌群调节作用的影响 | 第49-54页 |
| 4.4.4 饮食方式对SCFAs表达的影响 | 第54-55页 |
| 4.4.5 饮食方式对脂质相关基因表达的影响 | 第55-56页 |
| 4.5 本章小结 | 第56-57页 |
| 第五章 鲍鱼硫酸多糖促进拟杆菌增殖机制的研究 | 第57-66页 |
| 5.1 引言 | 第57页 |
| 5.2 实验材料 | 第57-58页 |
| 5.2.1 实验原料 | 第57页 |
| 5.2.2 实验仪器 | 第57-58页 |
| 5.2.3 实验试剂 | 第58页 |
| 5.3 实验方法 | 第58-60页 |
| 5.3.1 AGSP的制备与纯化 | 第58页 |
| 5.3.2 体外发酵 | 第58-59页 |
| 5.3.3 SCFAs的测定 | 第59页 |
| 5.3.4 薄层色谱(TLC) | 第59页 |
| 5.3.5 碳水化合物的测定 | 第59页 |
| 5.3.6 拟杆菌的分离及鉴定 | 第59-60页 |
| 5.3.7 拟杆菌多糖利用的分析 | 第60页 |
| 5.3.8 统计学分析 | 第60页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第60-65页 |
| 5.4.1 AGSP对肠道菌群中拟杆菌的影响 | 第60-61页 |
| 5.4.2 AGSP对SCFAs表达的影响 | 第61-62页 |
| 5.4.3 总糖的测定 | 第62-63页 |
| 5.4.4 拟杆菌分离与鉴定 | 第63-64页 |
| 5.4.5 拟杆菌多糖利用能力的分析 | 第64-65页 |
| 5.5 本章小结 | 第65-66页 |
| 第六章 结论 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 研究成果 | 第76页 |
